Aislamiento, identificación y evaluación de cepas autóctonas de Trichoderma spp. antagonistas de patógenos del suelo

Luz María Samaniego-Fernández, Maimouna Harouna, Odalys Corbea, Ana Julia Rondón-Castillo, Iraní Placeres-Espinosa

Resumen

Con el fin de aislar, identificar y evaluar cepas autóctonas de Trichoderma spp. de la provincia Matanzas, Cuba, se realizó una prospección en dos agroecosistemas con suelo ferralítico rojo; a partir de uno de ellos, se aislaron e identificaron tres cepas autóctonas de este hongo. Mediante la técnica de cultivo dual se evaluó el antagonismo in vitro de las especies autóctonas obtenidas y de las especies de referencia Trichoderma harzianum Rifai 3(A-34)2 y Trichoderma viride Persoon 5(TS-3)1 contra los hongos fitopatógenos Rhizoctonia solani Kühn, Fusarium spp. y Sclerotium rolfsii Sacc., causantes de enfermedades en cultivos agrícolas de la provincia. Se determinaron el crecimiento lineal diario (radios de las colonias), la velocidad de crecimiento y el porcentaje de inhibición del crecimiento radial (PICR) de los antagonistas. Sus valores se procesaron mediante Análisis de Varianza Simple. Las cepas autóctonas de Trichoderma aisladas e identificadas fueron Trichoderma 2T-aislado, T. harzianum 6(A-53)2 y T. viride 4(TS-3)1, de las cuales, Trichoderma 2T-aislado resultó el antagonista in vitro más eficiente contra los tres hongos fitopatógenos, seguida de T. viride 4(TS-3)1 (biocontrolador de R. solani y S. rolfsii y con menor capacidad antagónica contra Fusarium spp.) y T. harzianum 6(A-53)2. Entre las cepas de referencia, T. harzianum 3(A-34)2 presentó el mayor antagonismo contra estos hongos. Tanto las cepas autóctonas como las de referencia, presentaron diferentes niveles de actividad antagónica in vitro contra los fitopatógenos.

Palabras clave

antagonismo; competencia; control biológico; micoparasitismo; Trichoderma

Texto completo:

PDF HTML XML-JATS EPUB

Referencias

Hoyos L, Chaparro P, Abramsky M, Chet I, Orduz S. Evaluación de aislamientos de Trichoderma spp. contra Rhizoctonia solani y Sclerotium rolfsii bajo condiciones in vitro y de invernadero. Agron. Col. 2008; 26: 451-458.

Guédez C, Cañizalez LM, Castillo C, Olivar R. Evaluación in vitro de aislamientos de Trichoderma harzianum para el control de Rhizoctonia solani, Sclerotium rolfsii y Fusarium oxysporum en plantas de tomate. Rev. Soc. Ven. Microbiol. 2012; 32 (1):12.

Bale J, Van Lenteren JC, Bigler F. Biological control and sustainable food production. Phil. Trans. R. Soc. B. 2008; 363: 761-776.

Mendoza C. Enfermedades fungosas de hortalizas. Universidad Autónoma de Chapingo. 1996; Chapingo, Edo. de México, México, 85 pp.

Guchi E. Disease management practice on potato (Solanum tuberosum L.) in Ethiopia. World Journal of Agricultural Research. 2015; 3(1): 34-42.

Polanco CD, Castro JL. Estudios sobre el control biológico de Sclerotium rolfsii. Agronomía Tropical. 2005; 27: 539-547.

Espinoza LL, Mendoza C. Etiología de la pudrición de raíz y cuello del chile (Capsicum annuum L.) ocasionado por el hongo Phytophthora capsici en la región de Valseguillo, Puebla, México. Fitopatología. 2001; 30: 47-55.

Reyes A, Cristóbal J, Ruiz E, Tun JM. Inhibición del crecimiento in vitro de Fusarium sp. aislado de chile habanero (Capsicum chinensis) con hongos antagonistas. Fitosanidad. 2012; 16(3): 161-165.

Kücük C, Kivanc M. Isolation of Trichoderma spp. and determination of their antifungal, biochemical and physiological features. Turkish Journal of Biology. 2003; 27: 247- 253.

Hoyos L, Duque G, Orduz S. Antagonismo in vitro de Trichoderma spp. sobre aislamientos de Sclerotinia spp. y Rhizoctonia spp. Revista Colombiana de Ciencias Hortícolas. 2008; 2(1): 76-86.

Michel AC, Otero MA, Ariza R, Barrios A, Alarcón N. Eficiencia biológica de cepas nativas de Trichoderma spp., en el control de Sclerotium rolfsii Sacc., en cacahuate. Avances en Investigación Agropecuaria. 2013; 17(3): 89-107.

Pérez H, Sanabria N. Control in vitro e in vivo de Fusarium oxysporum f. sp. lycopersici con Trichoderma spp. y Bacillus spp. Cursos-foros del XXIII Congreso Venezolano de Fitopatología. Caracas, Venezuela. 2013; [https://sites.google.com/site/cursosforosdelxxiiicongvenfito/congreso/resumenes-socializados/trabajos-por-instituciones/universidad-central-de-venezuela-ucv] [Consulta: 15 de abril de 2018].

Infante A, Pineda M, Portillo G. Trichoderma harzianum Rifai como agente biocontrolador in vitro de enfermedades fungosas asociadas a Solanum lycopersicum L. Cursos-foros del XXIII Congreso Venezolano de Fitopatología. Caracas, Venezuela. 2013; [https://sites.google.com/site/ideafitopatologia2013/home/resumenes-socializados/indice-general-de-resumenes/trichoderma-harzianum-rifai-como-agente-de-biocontrolador-in-vitro-de-enfermedades-fungosas-asociadas-a-solanum-lycopersicum-l] [Consulta: 15 de abril de 2018].

Páez O. Uso Agrícola de Trichoderma. 2006; [Disponible en: http://www.soilfertility.com/trichoderma/espagnol/index.shtml] [Consulta: 22/5/2016]

Hernández A, Pérez JM, Bosch D, Castro N. Clasificación de los Suelos de Cuba 2015. Instituto Nacional de Ciencias Agrícolas. Instituto de Suelos. Ediciones INCA, Cuba, 2015; 91p.

Google Map. Directorio Cartográfico (DICES). 2018; [Disponible en: Disponible en: http://mapasamerica.dices.net/cuba/mapa.php?nombre=Guanabana&id=23634 ] [Consulta: mayo, 2018].

Bateman R, Carey M. Metodología para la toma de muestras. Boletín Técnico No. 2. Ediciones CABI, Reino Unido, 1995; 21p.

Villegas MA. Trichoderma viride Pers. Características generales y su potencial biológico en la agricultura sostenible. Orius Biotecnología. Colombia. 2005; [Disponible en: http://www.oriusbiotecnologia.com/site/16.index.php?id=20,66,0,0,1,0]. [Consulta: 25/4/2016].

Arias M. Hongos antagonistas o micopatógenos. En: Guía de insumos biológicos para el Manejo Integrado de Plagas. Corporación para Desarrollo de Insumos y Servicios Agroecológicos Harmonia (Ed.). 2004; 59-62. ISBN: 958-33-5875-4.

Sandoval I, Stefanova M. Efectividad de biopreparados de Trichoderma spp. en el control de los hongos fitopatógenos del suelo. Boletín Técnico No. 2. Instituto de Investigaciones de Sanidad Vegetal (INISAV). La Habana, Cuba. 2000; 22 p.

Rifai MA. A revision of the genus Trichoderma. Mycological Papers. 1969; 116:1-56.

Samuels GJ. Trichoderma: Systematics, the sexual state, and ecology. Phytopathology. 2006; 96(2): 195-206.

Barnett HL, Hunter BB. 1998. Illustrated genera of imperfect fungi. (4th Ed). The American Phytopathological Society. 1998; St. Paul, Minnesota, USA. pp. 218.

Vero S, Mondino P. Curso de Control Biológico de Enfermedades de Plantas (PEDECIBA Química); Unidad de Fitopatología. Anexo prácticos. 2003. [Disponible en: http://www.pv.fagro.edu.uy/fitopato/Curso_CB/Anexo_practicos.html (pp. 3)] [Consulta: 16/02/2017].

Stefanova M, Vázquez L. Características y uso de bioplaguicidas contra plagas del suelo. Manual para la Adopción del Manejo Agroecológico de Plagas en Fincas de la Agricultura Suburbana. Ed. Asociación Cubana de Técnicos Azucareros y Forestales (ACTAF). La Habana. 2011; pp. 245-265.

Morton DJ, Stroube WH. Antagonistic and stimulatory effects of soil microorganisms upon Sclerotium rolfsii. Phytopathology. 1955; 45: 417-420.

Elías RO, Arcos O, Arbeláez G. Estudio del antagonismo de algunas especies de Trichoderma aisladas de suelos colombianos en el control de Fusarium oxysporum y Rhizoctonia solani. Agron. Colomb. 1993; 10:52-61.

Worasatit N, Sivasithamparam K, Ghisalberti EL, Rowland C. Variation in pyrone production, lytic enzymes and control of Rhizoctonia root rot of wheat among single-spore isolates of Trichoderma koningii. Mycological Research. 1994; 98:1357-1363.

Reyes T, Rodríguez G, Pupo A, Alarcón L, Limonta Y. Efectividad in vitro de Trichoderma harzianum Rifai para el biocontrol de Rhizoctonia solani Kühn y Pyricularia grisea Sacc. aislados en el cultivo del arroz (Oryza sativa L.). Fitosanidad. 2007; 11 (1): 29-33.

Hernández A, Sierra A, Carr A. Evaluación in vitro del antagonismo de especies de Trichoderma sobre hongos fitopatógenos que afectan las vitroplantas de piña (Ananas comosus (L.) Merr). Fitosanidad. 2006; 10 (2): 105- 108.

Fernández RJ, Suárez CL. Antagonismo in vitro de Trichoderma harzianum Rifai sobre Fusarium oxysporum Schlecht f. sp. passiflorae en maracuyá (Passiflora edulis Sims var. flavicarpa) del municipio zona bananera colombiana. Rev. Fac. Nac. Agron. Medellín. 2009; 62(1): 4743-4748.

Caballero AJ, Pocasangre LE, Casanoves F, Avelino J, Tapia AC, Ortiz JL. Uso de aislamientos endofíticos de Trichoderma spp. para el biocontrol del Fusarium oxysporum f. sp. cubense (Mal de Panamá) raza 1 en vitroplantas de banano del cultivar Gros Michel (AAA) en condiciones de invernadero. Universitas, 2013; 4 (1): 71-82.

Srivastava RK, Prasad RD, Rangeshwaran R, Kannan P. Detection and Quantification of Proteins Induced by Trichoderma in Chickpea-Rhizoctonia System. Plant Disease Research, 2002; 17(2): 252-255.

Kumar K, Amaresan N, Bhagat S, Madhuri K, Srivastava RC. Isolation and Characterization of Trichoderma spp. for Antagonistic Activity Against Root Rot and Foliar Pathogens. Indian J Microbiol. 2012; 52(2): 137-144.

Enlaces refback

  • No hay ningún enlace refback.