Resistencia antimicrobiana de aislados cubanos de Mycoplasma gallisepticum

Ariadna Duque-Ortiz, Anisleidy Pérez-Castillo, Evelyn Lobo-Rivero

Resumen


Los trastornos respiratorios constituyen una de las principales causas de muerte en el sector avícola. Dentro de estas patologías se encuentra la micoplasmosis aviar, enfermedad infecto-contagiosa de curso crónico. Aunque en este proceso participan varias especies de micoplasmas, se reconoce a Mycoplasma gallisepticum como la principal especie. Unas de las medidas destinadas al control de esta enfermedad es el tratamiento con antibióticos, pues ayuda a mejorar los indicadores productivos y reducir las pérdidas económicas causadas por brotes clínicos. Entre los grupos de antibióticos que más se utilizan en la avicultura se encuentran las quinolonas, las tetraciclinas y los macrólidos, pues se reconocen como efectivos contra Mycoplasma spp. El objetivo de este trabajo fue determinar la actividad antimicrobiana in vitro de cinco agentes antimicrobianos frente a 10 aislados cubanos de M. gallisepticum, procedentes de diferentes granjas avícolas de la provincia Mayabeque destinadas a la producción de huevos. Para ello se utilizó el método de Concentración Mínima Inhibitoria (CMI) y como resultado se obtuvo una CMI de 2 µg/ml para Enrofloxacina; 32 µg/ml para la Ciprofloxacina; 0,0625 µg/ml para Tilosina; 0,5 µg/ml a la Oxitetraciclina y 0,031 µg/ml para Minociclina. Este resultado indica un incremento de la resistencia en estos aislados frente a los dos compuestos de la familia de las quinolonas que se usaron en el estudio; además, brinda una información práctica para el tratamiento de la infección contra M. gallisepticum en la avicultura.

Palabras clave


Micoplasmosis aviar; Mycoplasma gallisepticum; susceptibilidad antimicrobiana

Texto completo:

HTML PDF EPUB

Referencias


Ley DH, Yoder HW. Mycoplasma gallisepticum infection. In: Calnek BW, Barnes HJ, Beard CW, McDougald LR, Saif YM, editor. Diseases of Poultry. 10th ed. Iowa State Univ. Press1997. pp. 194–207.

Ley D. Mycoplasma gallisepticum infection. In: Saif YM BH, Glisson JR, Fadly AM, McDougald LR, Swayne DE, editor. Diseases of poultry. 11th ed. Iowa State University Press2003. pp. 722-744.

McMartin D, Khan M, Farver T, Christie G. Delineation of the lateral spread of Mycoplasma gallisepticum infection in chickens. Avian Dis. 1987:814-819.

Hofacre C. Antimicrobial drug use in poultry. In: Giguere S PJ, Baggot JD, Walker RD, Dowling PM. Oxford: Wiley Blackwell, editor. Antimicrobial Therapy in Veterinary Medicine. 4 ed 2007. pp. 545-553.

Reinhardt A, Kempf I, Kobisch M, Gautier-Bouchardon A. Fluoroquinolone resistance in Mycoplasma gallisepticum: DNA gyrase as primary target of enrofloxacin and impact of mutations in topoisomerases on resistance level. J Antimicrob Chemoth. 2002;50(4):589-92.

Sader, H. Resistencia antimicrobiana en Latinoamérica. Rev Chil Infectol.2002; 19: 5-13.

Ayling RD, Baker SE, Nicholas RA, Peek ML, Simon AJ. Comparison of in vitro activity of danofloxacin, florfenicol, oxytetracycline, spectinomycin and tilmicosin against Mycoplasma mycoides subspecies mycoides small colony type. Vet Rec. 2000;146(9):243-246.

IMV. Informe de Balance trimestral. Cuba: Instituto de Medicina Veterinaria IMV, 2015.

Organización Mundial de Sanidad Animal (OIE). Capítulo sobre Micoplasmosis aviar. 2014

Jordan F. Recovery and identification of avian mycoplasmas. Methods in mycoplasmology. 1983;2:69.

Poveda JB. Biochemical characteristics in mycoplasma identification. Methods Mol Biol. 1998;104:69-78.

García M, Ikuta N, Levisohn S, Kleven S. Evaluation and comparison of various PCR methods for detection of Mycoplasma gallisepticum infection in chickens. Avian Dis. 2005;49(1):125-132.

Hannan PC. Guidelines and recommendations for antimicrobial minimum inhibitory concentration (MIC) testing against veterinary mycoplasma species. Vet Res.2000;31(4):373-95.

Reunión Conjunta FAO/OMS/OIE de expertos sobre los antimicrobianos de importancia crítica. Informe de la reunión de expertos Sede de la FAO, Roma (Italia) del 26 al 30 de noviembre de 2007.

Organización Mundial de Sanidad Animal (OIE). Lista de antimicrobianos de importancia veterinaria de la OIE. Noviembre de 2007.

Comité de medicamentos para usos veterinarios (CVMP). Reunión conjunta FAO/OMS/OIE de expertos sobre la resistencia a los antimicrobianos de importancia crítica. Solicitud de datos e información. EMEA/CVMP/253620/2007, 14 de junio de 2007.

Saif Y. Diseases of Poultry 11th ed. Iowa State University Press 2003;56:719- 743.

Miranda CD, Kerhenberg C, Ulep C, Schwarz S, Roberts M. Diversity of tetracycline resistance genes in bacteria from chilean salmon farms. Antimicrob. Agents Chemother. 2003;47:883-888.

Chopra I, Roberts M. Tetracycline Antibiotics: Mode of Action, cations, molecular Biology, and Epidemiology of Bacterial Resistance. Microbiol Mol Biol Rev. 2001;65:232-260.

Gautier-Bouchardon A, Reinchardt AK, Kobisch M, Kempf I. In vitro develoment resistence to enrofloxacin, tylosi, tiamulin and oxytetrcycline in Mycoplama gallisepticum, Mycoplasma iowae y Mycoplasmas synoviae. Vet Mic. 2002;88:47-58.

Rivera-Tapia JA, Rodriguez N. Micoplasmas y antibioticos. Salud Pública Méx vol.48 n.1 Cuernavaca Jan./Feb. 2006. http://dx.doi.org/10.1590/S0036-36342006000100002

Gerchman I, Levisohn S, Mikula I, Manso-Silván L, Lysnyansky I. Characterization of in vivo-acquired resistance to macrolides of Mycoplasma gallisepticum strains isolated from poultry. Vet Res. 2011;42:90.

Stakenborg T, Vicca J, Butaye P, Maes D, Minion FC, Peeters J, De Kruif A, Haesebrouck F. Characterization of In Vivo acquired resistance of Mycoplasma hyopneumoniae to macrolides and lincosamides. Microb Drug Resist. 2005;11(3):290-294.

Wu CM, Wu H, Ning, Y., Wang, J., Du, X., Shen, J., 2005. Induction of macrolide resistance in Mycoplasma gallisepticum in vitro and its resistance-related mutations within domain V of 23S rRNA. FEMS Microbiol. Lett. 247(2):199-205.

Forrester CA, Bradbury J, Dare C, Domangue R, Windsor H, Tasker J, Mockett A. Mycoplasma gallisepticum in pheasants and the efficacy of tylvalosin to treat the disease. Avian Pathology. 2011;40(6):581-586

Gião Antunes N.T. Mecanismos de resistencia a las quinolonas en Mycoplasma mycoides subsp. mycoides LC. Tesis doctoral. Universidad de Las Palmas de Gran Canaria.2007.

Stipkovits, L. and Mockett, APA. Aivlosin granules for oral solution used for the treatment and prevention of mycoplasmosis due to Mycoplasma gallisepticum. Abstracts of the 15th Congress of the World Veterinary Poultry Association, Beijing, China. 2007; p. 537.

Stuart AD, Brown, TDK, Imrie G, Tasker J.B,and Mockett APA. Intra-cellular accumulation and trans-epithelial transport of aivlosin, tylosin and tilmicosin. The Pig Journal.2007;60: 2635.

Van Bambeke F, Michot JM, Van Eldere J, Tulkens PM.Quinolones in 2005: an update. Clin Microbiol Infect. 2005;11(4):256-280.

Andersson MI, MacGowan AP.Development of the quinolones. J. Antimicrob. Chemother. 2003; 51 Suppl 1:1-11.

Van Bambeke F. Glupezynski Y, Plésiat P, Pechère JC, Tulkens PM.Antibiotic efflux pumps in prokaryotic cells: occurrence, impact on resistance and strategies for the future of antimicrobial therapy. J Antimicrob Chemoth. 2003;51:1055-1065.

Gerchman I, Lysnyansky I, Perk S, Levisohn S. In vitro susceptibilities to fluoroquinolones in current and archived Mycoplasma gallisepticum and Mycoplasma synoviae isolates from meat-type turkeys. Vet Microbiol. 2008;131(3):266-276.

Gharaibeh S, Al-Rashdan M. Change in antimicrobial susceptibility of Mycoplasma gallisepticum field isolates. Vet Microbiol. 2011;150(3):379-383.

Reinhardt AK, Gautier-Bouchardon AV, Gicquel-Bruneau M, Kobisch M, Kempf I.Persistence of Mycoplasma gallisepticum in chickens after treatment with enrofloxacin without development of resistance. Vet Microbiol. 2005;106(1-2):129-137.


Enlaces refback

  • No hay ningún enlace refback.


Licencia de Creative Commons
Revista de Salud Animal by Centro Nacional de Sanidad Agropecuaria is licensed under a Creative Commons Reconocimiento-NoComercial 4.0 Internacional License.