Alteraciones hematológicas encontradas en caballos (Equus caballus) infectados con Babesia caballi y Theileria equi

Adrian Alberto Díaz-Sánchez, Osvaldo Fonseca-Rodríguez, Sergio Luis del Castillo-Domínguez, Yanet Alfonso-Dorta, Evelyn Lobo-Rivero, Belkis Corona-González, Ernesto Vega-Cañizares

Resumen

Los protozoos Babesia caballi y Theileria equi son los agentes etiológicos de la piroplasmosis equina. Esta enfermedad afecta a diferentes especies de équidos y tiene un impacto económico importante en la industria equina. El objetivo del presente trabajo fue determinar la presencia de B. caballi y T. equi mediante frotis sanguíneo y su asociación con los parámetros hematológicos. Se analizaron 58 muestras de sangre de caballos clínicamente sanos, a las que se les realizó el diagnóstico de B. caballi y T. equi a partir del frotis sanguíneo, así como el examen hematológico de la serie roja y de la serie blanca. El valor medio de todos los parámetros hematológicos evaluados estuvo entre los valores fisiológicos descritos para la especie equina. Del total de muestras analizadas se observaron formaciones intraeritrocíticas compatibles con B. caballi y T. equi en 3/58 (5,2 %) y 8/58 (13,8 %) animales, respectivamente; de estos animales, 6/11 (10,3 %) tenían valores de hematocrito inferiores a los fisiológicos. Se evaluó la asociación entre animales positivos y posibles factores de riesgo como la edad, el sexo, la presencia de garrapatas y el contacto con bovinos. El análisis estadístico mostró diferencias significativas al evaluar la relación entre los valores de hematocrito y las muestras positivas a T. equi.

Palabras clave

piroplasmosis equina; Babesia caballi; Theileria equi; caballos; hematología

Texto completo:

PDF EPUB HTML

Referencias

De Waal D, Heerden Jv, Coetzer J, Tustin R. Equine piroplasmosis. Infectious diseases of livestock, Volume One. 2004(Ed. 2):425-434.

Rothschild CM. Equine Piroplasmosis. J Equine Vet Sci. 2013;33(7):497-508.

OIE TM. Equine piroplasmosis. NB: Version adopted by the World Assembly of Delegates of the OIE in. 2014:8.

Scoles GA, Ueti MW. Vector ecology of equine piroplasmosis. Annu Rev Entomol. 2015;60:561-580.

Zobba R, Ardu M, Niccolini S, Chessa B, Manna L, Cocco R, et al. Clinical and Laboratory Findings in Equine Piroplasmosis. J Equine Vet Sci. 2008;28(5):301-308.

Al-Obaidi Q, Mohd M, Al-Sultan I, Azlinda A, Mohd A. Equine piroplasmosis in Kelantan, Malaysia: clinico-hemato-biochemical alterations in subclinically and clinically infected equids. Trop Biomed. 2016;33(4):619-631.

Lukaszewska J, Adaszek L, Winiarczyk S. Hematological changes in granulocytic anaplasmosis in dogs and horses. Zycie Wet. 2008;83:827-831.

Camacho A, Guitian F, Pallas E, Gestal J, Olmeda A, Habela M, et al. Theileria (Babesia) equi and Babesia caballi infections in horses in Galicia, Spain. Trop Anim Health Pro. 2005;37(4):293-302.

OIE TM. Manual of diagnostic tests and vaccines for terrestrial animals 2014.

Ogunremi O, Halbert G, Mainar-Jaime R, Benjamin J, Pfister K, Lopez-Rebollar L, et al. Accuracy of an indirect fluorescent-antibody test and of a complement-fixation test for the diagnosis of Babesia caballi in field samples from horses. Prev Vet Med. 2008;83(1):41-51.

Oliver A, Hernandez J, Roman EI. Concomitant haemoparasitosis with Piroplasma caballi and Nuttallia equi in a horse from the province of Ciego de Avila. Ciencia y Técnica en la Agricultura, Veterinaria. 1985;7(2):79-82.

Asgarali Z, Coombs DK, Mohammed F, Campbell MD, Caesar E. A serological study of Babesia caballi and Theileria equi in Thoroughbreds in Trinidad. Vet Parasitol. 2007;144(1-2):167-171.

Zhang J, Kelly P, Li J, Xu C, Wang C. Molecular Detection of Theileria spp. in Livestock on Five Caribbean Islands. BioMed Research International. 2015;2015:624728.

Wise L, Butler C, Karasek I, Gemmell G, Werners A, Kappmeyer L, et al. Analysis of Theileria equi and Babesia caballi in equine populations of the West Indies. J Equine Vet Sci. 2016;39:S99-S100.

Salabarria FF, Gonzalez M, Jimenez T. Complement fixation in the serological diagnosis of Nuttalia [Babesia] equi. Revista Cubana de Ciencias Veterinarias. 1982;13(1):81-84.

Holbrook A, Johnson A, Madden P. Equine Piroplasmosis intraerithrocytic development of Babesia caballi (Nutall) and Babesia equi (Laveran). Am J Vet Res. 1968;29(2):297.

Cowell RL, Tyler RD. Diagnostic Cytology and Hematology of the Horse: Elsevier Health Sciences; 2001.

Teglas M, Matern E, Lein S, Foley P, Mahan SM, Foley J. Ticks and tick-borne disease in Guatemalan cattle and horses. Vet Parasitol. 2005;131(1–2):119-127.

Barros-Battesti DM, Hernández MR, Famadas KM, Onofrio VC, Beati L, Guglielmone AA. The ixodid ticks (Acari: Ixodidae) of Cuba. Syst Appl Acarol. 2009;14(2):101-128.

Hervada Vidal X, Santiago Pérez M, Vázquez Fernández E, Castillo Salgado C, Loyola Elizondo E, Silva Ayçaguer LC. Epidat 3.0 programa para análisis epidemiológico de datos tabulados. Rev Esp Salud Públ. 2004;78(2):277-280.

Di Rienzo JA, Casanoves F, Balzarini MG, Gonzalez L, Tablada M, Robledo CW. InfoStat [programa de cómputo]. Córdoba, Argentina: Universidad Nacional de Córdoba; 2011. versión 24-03-2011:[Available from: http://www.infostat.com.ar/.

Malekifard F, Tavassoli M, Yakhchali M, Darvishzadeh R. Detection of Theileria equi and Babesia caballi using microscopic and molecular methods in horses in suburb of Urmia, Iran. Vet Res Forum. 2014;5(2):129-133.

Grause JF, Ueti MW, Nelson JT, Knowles DP, Kappmeyer LS, Bunn TO. Efficacy of imidocarb dipropionate in eliminating Theileria equi from experimentally infected horses. Vet J. 2013;196(3):541-546.

Dieckmann SM, Hoelzle K, Dieckmann MP, Straube I, Hofmann-Lehmann R, Hoelzle LE. Occurrence of hemotrophic mycoplasmas in horses with correlation to hematological findings. Vet Microbiol. 2012;160(1–2):43-52.

Sumbria D, Singla LD, Sharma A, Bal MS, Randhawa CS. Molecular survey in relation to risk factors and haemato-biochemical alteration in Theileria equi infection of equines in Punjab Province, India. Vet Parasitol: Regional Studies and Reports. 2017;8:43-50.

Ueti MW, Mealey RH, Kappmeyer LS, White SN, Kumpula-McWhirter N, Pelzel AM, et al. Re-Emergence of the Apicomplexan Theileria equi in the United States: Elimination of Persistent Infection and Transmission Risk. PloS one. 2012;7(9):e44713.

Lording PM. Erythrocytes. Veterinary Clinics of North America: Equine Practice. 2008;24(2):225-237.

Zobba R, Ardu M, Niccolini S, Cubeddu F, Dimauro C, Bonelli P, et al. Physical, Hematological, and Biochemical Responses to Acute Intense Exercise in Polo Horses. J Equine Vet Sci. 2011;31(9):542-548.

Padalino B, Rubino G, Lacinio R, Petazzi F. Observations on the Hematology of Standardbred Horses in Training and Racing in Southern Italy. J Equine Vet Sci. 2014;34(3):398-402.

Lacerda L, Campos R, Sperb M, Soares E, Barbosa P, Godinho E, et al. Hematologic and biochemical parameters in three high performance horse breeds from Southern Brazil. Arch Vet Sci. 2006;11(2):40.

Poole DC, Erickson HH. Highly Athletic Terrestrial Mammals: Horses and Dogs. Comprehensive Physiology: John Wiley & Sons, Inc.; 2011.

Bilbao MAS. Leucorreducción de sangre de equinos (Equus caballus) para transfusión. 2005.

Carrick JB, Begg AP. Peripheral Blood Leukocytes. Veterinary Clinics of North America: Equine Practice. 2008;24(2):239-259.

Schwint ON, Knowles DP, Ueti MW, Kappmeyer LS, Scoles GA. Transmission of Babesia caballi by Dermacentor nitens (Acari: Ixodidae) is restricted to one generation in the absence of alimentary reinfection on a susceptible equine host. J Med Entomol. 2008;45(6):1152-1155.

Bartolome Del Pino LE, Roberto N, Vincenzo V, Francesca I, Antonella C, Luca AG, et al. Babesia caballi and Theileria equi infections in horses in Central-Southern Italy: Sero-molecular survey and associated risk factors. Ticks Tick-Borne Dis. 2016: 7(3):462-469

Bahrami S, Ghadrdan AR, Mirabdollahi SM, Fayed MR. Diagnosis of subclinical equine theileriosis in center of Iran using parasitological and molecular methods. Trop Biomed. 2014;31(1):110-117.

Enlaces refback

  • No hay ningún enlace refback.