La producción de calabaza (Cucurbita pepo L.) es considerada como una opción comercial rentable, por la demanda económica a nivel nacional e internacional (11. SAGARPA. 2019. Secretaria de Agricultura, Ganadería, Desarrollo Rural, Pesca y Alimentación. [en línea] 2019 octubre 24 [Fecha de acceso 17 de diciembre de 2019]. URL disponible en: URL disponible en: http://www.sagarpa.gob.mx .). Como principales estados productores en México, se ubican Sonora, con más de 180 000 toneladas; Puebla, con más de 62 000 toneladas, y Sinaloa, con más de 51 000 toneladas (22. SAGARPA. 2018. Secretaría de Agricultura, Ganadería, Desarrollo Rural, Pesca y Alimentación. [en línea] 2018 octubre 24 [Fecha de acceso 17 de diciembre de 2019]. URL disponible en: URL disponible en: http://www.sagarpa.gob.mx .). Sin embargo, el cultivo de calabaza es afectado por diferentes enfermedades, entre las cuales se destaca el mildiu polvoriento, una de las de mayor importancia (33. Cebreros SF, Sánchez CMA, Acosta MI. Supervivencia de Erysiphe cichoracearum de Candolle causante de la cenicilla de las cucurbitáceas en el Valle de Culiacán. Memorias del XVIII Congreso Nacional de la Sociedad Mexicana de Fitopatología. Puebla, Puebla, México. 1991. 120 p.), pues ha causado pérdidas económicas considerables superiores a 50 % (44. Leonard P, Gianessi NR. 2005. The value of fungicides in U.S. In: Crop production. CropLife Foundation. Washington, USA. [en línea] 2019 octubre 24 [Fecha de acceso 17 de diciembre de 2019]. URL disponible en: URL disponible en: https://croplifefoundation.files.wordpress .).
A nivel mundial, los géneros identificados de mildiu polvoriento que afectan a la familia de las cucurbitáceas son Golovinomyces cichoracearum (DC.) V.P. Heluta, anteriormente conocida como Erysiphe cichoracearum DC, y Podosphaera xanthii (Castagne) U. Braun & Shishkoff, anteriormente referido como Sphaerotheca fuliginea (Schltdl.) Pollacci (55. Braun U, Shishkoff N, Takamatsu S. Phylogeny of Podosphaer sect. Sphaerotheca subsect Magnicellulatae (Sphaerotheca fuliginea auct. s.lat.) inferred from rDNA ITS sequences - a taxonomic interpretation. Schlechtendalia. 2001; 7: 45-52.). Al respecto, Braun et al. (66. Braun U, Cook RTA, Inman AJ, Shin D. The taxonomy of the powdery mildew fungi. In Bélanger (eds) The powdery mildews a comprehensive treatise. APS Press, St. Paul, MN, USA. 2002; pp. 13-55.) mencionan que ambos géneros causan síntomas muy similares, sin embargo, pueden distinguirse fácilmente al microscopio óptico. Como síntoma del mildiu polvoriento se observa un polvillo blanquecino que puede afectar, por lo general, hojas, peciolos y tallos (77. Glawe DA. The powdery mildews: a review of the world´s most familiar (yet poorly known) plant pathogens. Annu. Rev. Phytopathology. 2008; 46: 27-51., 88. Cho SE, Zhao TT, Choi IYY, Choi J, Shin HD. Primer informe de moho polvoriento causado por Podosphaera xanthii sobre Ramie en Corea. The American Phytopathological Society. 2016; 100(7):1943-7692.). Este patógeno causa afectación a la actividad fotosintética, adelanta la senescencia de las plantas y provoca la maduración prematura de los frutos, acortando así el ciclo biológico del cultivo (99. Bojórquez RC, León FJ, Allende MR, Muy RMD, Carrillo FJA, Valdez TJB, et al. Characterization of powdery mildew in cucumber plants under greenhouse conditions in the Culiacan Valley, Sinaloa, Mexico. African Journal of Agricultural Research. 2012; 7(21):3237-3248.,1010. González MN, Martínez CB, Infante MD. Mildiu polvoriento en las cucurbitáceas. Rev. Protec. Veg. 2010; 25(1): 44-50.).
Como agente causal del mildiu polvoriento se ha identificado a G. cichoracearum (1111. McCreight JD. Melon-powdery mildew interactions reveal variation in melon cultigens and Podosphaera xanthii races 1 and 2. J Amer Soc Hort Sci. 2006;131: 59-65.). En congruencia con esto, Cebreros et al. (33. Cebreros SF, Sánchez CMA, Acosta MI. Supervivencia de Erysiphe cichoracearum de Candolle causante de la cenicilla de las cucurbitáceas en el Valle de Culiacán. Memorias del XVIII Congreso Nacional de la Sociedad Mexicana de Fitopatología. Puebla, Puebla, México. 1991. 120 p.) identificaron a G. cichoracearum como el causante de la cenicilla de las cucurbitáceas en el Valle de Culiacán Sinaloa, México, mediante la observación de las características asexuales. Sin embargo, en estudios posteriores mediante el uso de técnicas de avanzadas, Bojórquez et al. (99. Bojórquez RC, León FJ, Allende MR, Muy RMD, Carrillo FJA, Valdez TJB, et al. Characterization of powdery mildew in cucumber plants under greenhouse conditions in the Culiacan Valley, Sinaloa, Mexico. African Journal of Agricultural Research. 2012; 7(21):3237-3248.) y Gastélum et al. (1212. Gastélum RF, Apodaca SMA, Martínez VMC, Espinosa MS. Podosphaera Sect. Sphaerotheca) xanthii (Castagne). Brawn, U. y Shishkoff, N. en cucurbitáceas en el norte de Sinaloa, México. Rev. Mex. Fitopatología. 2005; 23:162-168.; 1313. Gastélum RF, Maldonado MIE, Beltrán PH, Apodaca SMA, Espinoza MS, Martínez VMC, Longoria ERM, Olivas PNG. Powdery mildews in agricultural crops of Sinaloa: Current status on their identification and future research lines. Rev. Mex. Fitopatología . 2017; 35:106-129.) corroboraron únicamente a P. xanthii como el principal agente causal del mildiu polvoriento en cucurbitáceas en México. En Tehuacán, Puebla, no hay antecedentes sobre la confirmación del agente causal del mildiu polvoriento en calabaza.
Para identificar a P. xanthii se han usado las características de la fase sexual (66. Braun U, Cook RTA, Inman AJ, Shin D. The taxonomy of the powdery mildew fungi. In Bélanger (eds) The powdery mildews a comprehensive treatise. APS Press, St. Paul, MN, USA. 2002; pp. 13-55., 99. Bojórquez RC, León FJ, Allende MR, Muy RMD, Carrillo FJA, Valdez TJB, et al. Characterization of powdery mildew in cucumber plants under greenhouse conditions in the Culiacan Valley, Sinaloa, Mexico. African Journal of Agricultural Research. 2012; 7(21):3237-3248.). Dentro de las características morfológicas del anamorfo que más se utilizan para la identificación, se encuentran el diámetro y la coloración de las hifas, los tipos de apresorios y de conidióforos, el número de conidios por cadena, la célula basal del conidióforo, la forma de los conidios y la presencia de cuerpos de fibrosina en los conidios (1313. Gastélum RF, Maldonado MIE, Beltrán PH, Apodaca SMA, Espinoza MS, Martínez VMC, Longoria ERM, Olivas PNG. Powdery mildews in agricultural crops of Sinaloa: Current status on their identification and future research lines. Rev. Mex. Fitopatología . 2017; 35:106-129.). Entre estas, las características del apresorio, así como los patrones de paredes terminales y externas de los conidios, combinados con caracteres analizados en microscopía de luz, son características clave para la identificación en especies de Erysiphales (1414. Braun U, Cook RTA. Taxonomy manual of the Erysiphales (Powdery mildews).CBS. Biodiversity Series No.11. 2012, pp. 1-707.,1515. Tovar PJM, Rosas SGH, García RMT, Camacho TM, Leyva MSG. Observaciones con MEB de cinco especies de Erysiphales en plantas ornamentales y frutales en el Estado de México. Rev. Scientiafungorum. 2018; 48: 33-4.), al igual que características de los haustorios (1616. Martínez CJ, Romero D, de la Torre F, Fernández OD, Tores JA, de Vicente A, et al. The functional characterization of Podosphaera xanthii candidate effector genes reveals novel target functions for fungal pathogenicity. Rev. Molecular Plant-Microbe Interactions. 2018, 31(9): 914-931.). En la actualidad, la identificación molecular de este patógeno representa el método más efectivo y rápido, sobre todo en países donde no se presenta el estado teleomórfico (99. Bojórquez RC, León FJ, Allende MR, Muy RMD, Carrillo FJA, Valdez TJB, et al. Characterization of powdery mildew in cucumber plants under greenhouse conditions in the Culiacan Valley, Sinaloa, Mexico. African Journal of Agricultural Research. 2012; 7(21):3237-3248., 1212. Gastélum RF, Apodaca SMA, Martínez VMC, Espinosa MS. Podosphaera Sect. Sphaerotheca) xanthii (Castagne). Brawn, U. y Shishkoff, N. en cucurbitáceas en el norte de Sinaloa, México. Rev. Mex. Fitopatología. 2005; 23:162-168., 1717. Chen RS, Chu C, Cheng CW, Chen WY, Tsay JG. Differentiation of two Powdery mildews of sunflower (Helianthus annuus) by PCR mediated method based on ITS sequences. Eur. J. Plant Pathol.2008; 121:1-8.). Sobre la base de lo referido anteriormente, el presente trabajo tuvo como objetivo identificar la presencia del agente causal del mildiu polvoriento en calabaza en Tehuacán, México.
La investigación se realizó en el campo experimental de la Universidad Tecnológica de Tehuacán, ubicada en la localidad de San Pablo Tepetzingo (N 18° 25” 32”; O 97° 20” 24”), a 1409 msnm.
Para la identificación del agente causal del mildiu polvoriento se confirmó, primeramente, la patogenicidad; para lo cual se tomaron muestras de plantas de cucurbitáceas con signos de infecciones recientes del área experimental de la UTT. Una vez en el laboratorio, con la ayuda del estereoscopio (Motic MIC5944 ST-36C-2LOO) y aumento 4x, con una aguja de siembra se tomaron de la colonia de cuatro a cinco conidios y se colocaron sobre el haz del cotiledón, utilizando igual variedad que en el área de muestreo [calabaza material híbrido (Grey Zucchini)], conservados en placas Petri sobre algodón humedecido a 100 % y con dimensiones de largo por ancho de 4,7 cm por 2,27 cm. Se reprodujo la inoculación en 25 placas Petri, bajo condiciones de laboratorio. Se corroboró la patogenicidad a partir de la aparición del signo con igual característica a las plantas muestreadas.
Comprobada la patogenicidad se procedió a la identificación, para lo cual se tomaron muestras de 50 plantas con infecciones recientes. De cada planta se tomaron tres hojas infectadas, se colocaron en bolsas de polietileno y se trasladaron al laboratorio; se conservaron a temperatura de 4 a 10°C y se analizaron antes de las 48 horas después de su colecta.
De las hojas colectadas en campo se prepararon 100 muestras para la caracterización de las estructuras de conidióforos y conidios, para lo cual se colocó cinta adhesiva transparente sobre la superficie infectada y se fijó a un portaobjetos que contenía una gota de agua destilada. Las observaciones se realizaron al microscopio óptico digital (Modelo -NLCD-30) con aumento de 40x, con el cual se tomaron fotos para documentar los resultados.
Para la identificación a partir de las estructuras asexuales, se consideró como conidióforo al segmento comprendido desde el septo de la célula basal hasta el último septo de la célula no hinchada. En cada conidióforo se evaluaron el número de conidios por cadena, el largo y ancho del conidio, así como la presencia de cuerpos de fibrosina, para lo cual se utilizaron hidróxido de potasio a 3 % y las características del tubo germinativo de los conidios. Con un pincel de cerdas se colocaron de tres a cuatro conidios sobre un portaobjetos y se incubaron durante 24 h a 100 % de humedad relativa, en cámara húmeda, con temperatura media de 22°C. Transcurrido este tiempo, se determinó la forma y el diámetro del tubo germinativo en su parte media; se evaluaron 100 muestras al microscopio óptico digital (Modelo -NLCD-30) con aumento de 40x, con el cual se tomaron fotos para documentar los resultados.
La determinación de los indicadores morfométricos para la identificación de los géneros se realizó tomando como base los criterios de Bojórquez et al. (99. Bojórquez RC, León FJ, Allende MR, Muy RMD, Carrillo FJA, Valdez TJB, et al. Characterization of powdery mildew in cucumber plants under greenhouse conditions in the Culiacan Valley, Sinaloa, Mexico. African Journal of Agricultural Research. 2012; 7(21):3237-3248.), Gastélum et al. (1313. Gastélum RF, Maldonado MIE, Beltrán PH, Apodaca SMA, Espinoza MS, Martínez VMC, Longoria ERM, Olivas PNG. Powdery mildews in agricultural crops of Sinaloa: Current status on their identification and future research lines. Rev. Mex. Fitopatología . 2017; 35:106-129.), Braun y Cook (1414. Braun U, Cook RTA. Taxonomy manual of the Erysiphales (Powdery mildews).CBS. Biodiversity Series No.11. 2012, pp. 1-707.). Los datos se tabularon en Excel, donde se determinaron la media y la desviación estándar para cada uno de los indicadores considerados en la identificación morfométrica de la fase anamórfica y teleomórfica.
Los casmotecios se colectaron de hojas, pecíolos y tallos. Con la ayuda de una aguja de siembra se transfirieron entre 5 y 10 estructuras a una gota de agua destilada, colocada previamente en un portaobjetos, sobre la cual se depositó un cubreobjetos. A estas estructuras se les determinó: forma, diámetro, longitud y ancho de las células peridiales. Para liberar el asca, se ejerció presión suave sobre la preparación (de casmotecios) con el borrador de un lápiz. De las ascas, se evalúo su forma, longitud y diámetro en su parte más ancha, así como el diámetro de la apertura ocular según Braun et al. (66. Braun U, Cook RTA, Inman AJ, Shin D. The taxonomy of the powdery mildew fungi. In Bélanger (eds) The powdery mildews a comprehensive treatise. APS Press, St. Paul, MN, USA. 2002; pp. 13-55., 1414. Braun U, Cook RTA. Taxonomy manual of the Erysiphales (Powdery mildews).CBS. Biodiversity Series No.11. 2012, pp. 1-707.); también se consideró el número de ascosporas. Las observaciones se realizaron al microscopio óptico digital (Modelo -NLCD-30) con aumento de 40x, con el cual se tomaron fotos para documentar los resultados.
Para la identificación molecular se tomaron muestras (hojas con síntomas de cenicilla) de tres localidades de Tehuacán, Puebla: San Pablo Tepetzingo (N 18° 25” 32”; O 97° 20” 24”), a 1 409 msnm; San Gabriel Chilac (N 18°21’45,6’’; O 97°20’14,2”), a 1 405 msnm; San Marcos Necoxtla (N 18°23’41,9"; O 97°20’50,8"), a 1480 msnm. Las muestras con síntomas de la enfermedad se colectaron únicamente de plantas de calabaza de los siguientes materiales: Grey Zucchini, Rocío y Luciana. Para la colecta del patógeno se consideraron 50 plantas contaminadas por cada localidad; asimismo, se consideró tomar muestras de lesiones iniciales en hojas. La colecta de las esporas se realizó mediante una bomba de vacío (GAST-DAO SHOWN Y DDA), usando una punta para micropipeta de 200 µl con filtro. Las muestras se conservaron en las puntas a temperatura de 0°C, hasta su procesamiento.
Para la extracción del ADN se usaron de 3 a 10 mg de los conidios obtenidos de cada una de las tres localidades, por separado, considerando la técnica descrita por Velarde et al. (1818. Velarde FS, Ortega MPF, Fierros LGA, Padilla VI, Gutiérrez PE, Rodríguez CFG, et al. Molecular and biological identification of physiological races 0 and 5 of Fusarium oxysporum Schlechtend.: Fr f.sp.ciceris (Padwick) Matuo & K. Sato of chickpea in northwest México. Revista Mexicana de Ciencias Agrícolas. 2015; 6(4):735-748.) modificado: en un mortero de porcelana estéril se vació el contenido de esporas de una punta de micropipeta, cortándola con un bisturí esterilizado. Se le agregó 1 ml de amortiguador de extracción que contenía NaCl 50 mM, EDTA 50 mM pH (8,5) y Tris base 350 mM (pH 8,5). Se maceró con un pistilo estéril y del macerado se transfirieron porciones de 600 µl a tubos eppendorf de 1,5 ml. A cada tubo se le añadieron 350 µl de CTAB al 10 %, se agitaron en vórtex de 10 a 15 segundos y se incubaron en Baño María 10 min a 90°C y se agitaron manualmente por inversión cada 3 min. Posteriormente, se sacaron del Baño María y se agregaron 350 µl de NaCl 5M; se agitaron por inversión y se incubaron a -20°C durante 30 minutos; se centrifugaron a 12000 rpm y 10°C en una centrífuga Eppendorf refrigerada. El sobrenadante se decantó en un tubo de 1,5 ml y se repartió en dos tubos con 600 µl cada uno. A cada tubo se le agregaron 600 µl de cloroformo previamente enfriado a -20°C, se agitaron en vórtex durante 15 segundos y se centrifugaron a 12 000 rpm, durante 10 min.
La fase acuosa se pasó a un tubo eppendorf nuevo de 1,5 µl; se agregó un volumen igual de isopropanol absoluto enfriado a -20°C, se agitó suavemente por inversión y se incubó a -20°C durante 30 min. Se centrifugó a 12 000 rpm durante 10 min y se decantó el contenido acuoso, colectando el precipitado que se dejó secar al aire, a temperatura ambiente, durante 15 min; finalmente, se resuspendió en 30 µl de agua ultrapura y se almacenó a 4°C. La integridad del ADN extraído se evaluó mediante electroforesis de 5 µl de la solución de ADN más 1 µl de tampón de electroforesis azul-naranja 6x, en un gel de agarosa a 1 % en solución tampón de corrida TBE, teñido con 1 µl de Gel Red, a 80 voltios durante 40 min, en una cámara de electroforesis (Thermo EC320, Minicell, Primo®). La pureza y concentración de ADN se midieron en un biofotómetro Eppendorf modelo 22331 (Eppendorf, Hamburgo, Alemania) (1919. Bojórquez RC, Maruthachalam K, McCreight DJ, Estrada JSR. Podosphaera xanthii but not Golovinomyces cichoracearum infects Cucurbits in a Greenhouse at Salinas, California. Cucurbit Genetics Cooperative Report. 2011; 33-34: 24-28.).
Los extractos de ADN, de las muestras colectadas de las tres localidades de Tehuacán, se sometieron a amplificación por PCR con el kit GoTaq PCR Core System I, Cat. M7660 Promega, Madison, WI, USA. (Promega, Madison, WI, EE. UU.). Para ello, se utilizó el par de cebadores ITS1 (5ʼ TCC GTA GGT GAA CCT GCG G 3ʼ) e ITS4 (5ʼTCC TCC GCT TAT TGA TAT GC 3ʼ) (White et al., citado por 20) para amplificar una región espaciadora transcrita interna específica, que incluye la subunidad ITS1 5,8 S e ITS4 del ADN ribosómico (ADNr) de Erysiphales. La mezcla de reacción de PCR contenía: 1,2 µl de MgCL2 25 mM, 3 µl de tampón verde de PCR 5x, 1 µl de cada uno de los cebadores a una concentración de 10 µM, 0,35 µl de mezcla de dNTPs 10 mM cada uno; 0,1 µl de taq polimerasa 5UmL-1, 2 µL de DNA 10 ng mL-1 de hongos como molde; se ajustó a un volumen final de 15 µL con agua ultrapura.
Para la reacción de PCR, se usó un termociclador Eppendorf Mastercycler (Eppendorf Scientific, Westbury, NY) con las siguientes condiciones: 5 min a 95°C; 30 ciclos de 1 min a 95°C, 1 min a 52 °C y 1 min a 72°C y una extensión final de 10 min a 72°C. Se usó un control positivo de ADN del hongo Beauveria bassiana, que previamente había dado positivo en todas las reacciones de PCR bajo las presentes condiciones y agua ultrapura como control negativo. Los productos de PCR obtenidos se enviaron a limpiar y secuenciar en el Laboratorio McLab, de San Francisco, CA, EE. UU. Las secuencias obtenidas se compararon en las bases del GenBank mediante el programa BLAST y se registraron en la misma base.
Las plantas infectadas de mildiu polvoriento presentaron colonias blanquecinas que se detectaron sobre las hojas, pecíolos y tallos, pero no se observaron sobre los frutos.
Se confirmó la patogenicidad en 100 % de todos los cotiledones inoculados. Las características de las colonias polvorientas coinciden con las descripciones de Bojórquez et al. (99. Bojórquez RC, León FJ, Allende MR, Muy RMD, Carrillo FJA, Valdez TJB, et al. Characterization of powdery mildew in cucumber plants under greenhouse conditions in the Culiacan Valley, Sinaloa, Mexico. African Journal of Agricultural Research. 2012; 7(21):3237-3248.) y Gastélum et al. (1313. Gastélum RF, Maldonado MIE, Beltrán PH, Apodaca SMA, Espinoza MS, Martínez VMC, Longoria ERM, Olivas PNG. Powdery mildews in agricultural crops of Sinaloa: Current status on their identification and future research lines. Rev. Mex. Fitopatología . 2017; 35:106-129.). La aparición de los primeros signos de la colonia ocurrió entre los cuatro y cinco días posteriores a la inoculación, lo cual corrobora lo notificado por los autores citados.
El patógeno presentó apresorios en forma de pezón (Figura 1 A) y conidióforos del tipo euoidium. Las células basales del conidióforo se observaron rectas o ligeramente curvas, con una talla que varió de 26 a 78 µm × 8,5 restringidas a 13,7 µm (Tabla 1), ligeramente en la base (Figura 2 B). Los conidios tienen forma elipsoidal-ovoide con un tamaño de 26,2 a 38,2 µm × 14,2 a 23,3 µm, con presencia de cuerpos de fibrosina en su interior (Figura 1 C). El patrón de germinación de conidios fue el subtipo brevitubus de fibroidium germinado lateralmente por un tubo germinal bifurcado simple en ocasiones. (Figura 1 D-E)
(*) En micrómetros N = número de observaciones
La aparición del estado sexual se detectó en julio, coincidiendo con el periodo de senescencia del cultivo y se observó en hojas, peciolos y tallos (Figura 2). Los casmotecios presentaron forma esférica con diámetro entre 74,8 y 121,5 µm (Tabla 1); y células peridiales irregulares (Figura 3 A), con un tamaño de 15,2 a 60,1 µm de largo por ancho. Estos cuerpos fructíferos contenían solo un asca con ocho ascosporas, aunque estas no se apreciaron en todos los casos (Figura 3 B). La apertura ocular del asca (Figura 3 C) presentó un diámetro de 18,5 µm. (Tabla 1)
La morfometría de las estructuras asexuales y sexuales coinciden con las descritas para Podosphaera xanthii por Braun y Cook (1414. Braun U, Cook RTA. Taxonomy manual of the Erysiphales (Powdery mildews).CBS. Biodiversity Series No.11. 2012, pp. 1-707.). En relación con estos aspectos, las características del conidióforo, célula basal del conidióforo, forma y medidas del conidio, son similares a las evaluaciones realizadas por Gastélum et al. (1212. Gastélum RF, Apodaca SMA, Martínez VMC, Espinosa MS. Podosphaera Sect. Sphaerotheca) xanthii (Castagne). Brawn, U. y Shishkoff, N. en cucurbitáceas en el norte de Sinaloa, México. Rev. Mex. Fitopatología. 2005; 23:162-168.); Bojórquez et al. (1919. Bojórquez RC, Maruthachalam K, McCreight DJ, Estrada JSR. Podosphaera xanthii but not Golovinomyces cichoracearum infects Cucurbits in a Greenhouse at Salinas, California. Cucurbit Genetics Cooperative Report. 2011; 33-34: 24-28.); Nayak y Babu (2121. Nayak AK, Babu BK. First report of powdery mildew on Lagenaria siceraria caused by Podosphaera xanthii in India. Journal of Plant Pathology. 2017; 99 (1): 287-304.); Cui et al. (2222. Cui H, Wu C, Zhu Q, Fan C, Gao P. First Report of Powdery Mildew Caused by Podosphaera xanthii on Lagenaria siceraria in China. Rev. Plant Disease. 2018; 102(11): 2374-2374.); Dorneles et al. (2323. Dorneles KR, Dallagnol LJ, Brunetto AE, Pazdiora PC. First report of powdery mildew caused by Podosphaera xanthii on Lagenaria siceraria in Brazil. Rev. Plant Disease . 2018;102(4): 823-824.). También se observaron apresorios con forma de pezón, como notificaron para esta especie diferentes autores. (1919. Bojórquez RC, Maruthachalam K, McCreight DJ, Estrada JSR. Podosphaera xanthii but not Golovinomyces cichoracearum infects Cucurbits in a Greenhouse at Salinas, California. Cucurbit Genetics Cooperative Report. 2011; 33-34: 24-28.;2323. Dorneles KR, Dallagnol LJ, Brunetto AE, Pazdiora PC. First report of powdery mildew caused by Podosphaera xanthii on Lagenaria siceraria in Brazil. Rev. Plant Disease . 2018;102(4): 823-824.; 2424. Chen YM, Huang TC, Liu HL, Chao CH. 2015. First report of the powdery mildew Podosphaera xanthii on Gynura bicolor. Australas Plant Dis Notes 10:27. [en línea] 2015 septiembre 28 [Fecha de acceso 17 de diciembre de 2019]. URL disponible en: URL disponible en: https://link.springer.com/article/10.1007/s13314-015-0177-y .; 2424. Chen YM, Huang TC, Liu HL, Chao CH. 2015. First report of the powdery mildew Podosphaera xanthii on Gynura bicolor. Australas Plant Dis Notes 10:27. [en línea] 2015 septiembre 28 [Fecha de acceso 17 de diciembre de 2019]. URL disponible en: URL disponible en: https://link.springer.com/article/10.1007/s13314-015-0177-y .).
Las características del casmotecio, célula peridial, apéndice y asca son similares a los resultados notificados por Bojórquez et al. (1919. Bojórquez RC, Maruthachalam K, McCreight DJ, Estrada JSR. Podosphaera xanthii but not Golovinomyces cichoracearum infects Cucurbits in a Greenhouse at Salinas, California. Cucurbit Genetics Cooperative Report. 2011; 33-34: 24-28.). En cuanto al diámetro del casmotecio, Gastélum et al. (1212. Gastélum RF, Apodaca SMA, Martínez VMC, Espinosa MS. Podosphaera Sect. Sphaerotheca) xanthii (Castagne). Brawn, U. y Shishkoff, N. en cucurbitáceas en el norte de Sinaloa, México. Rev. Mex. Fitopatología. 2005; 23:162-168.) refieren que son menores a 104,2 µm, mientras los valores referidos por Bojórquez et al. (1919. Bojórquez RC, Maruthachalam K, McCreight DJ, Estrada JSR. Podosphaera xanthii but not Golovinomyces cichoracearum infects Cucurbits in a Greenhouse at Salinas, California. Cucurbit Genetics Cooperative Report. 2011; 33-34: 24-28.) varían de 119,5 - 121 µm. Los valores obtenidos para esta estructura, en los resultados mostrados, coinciden con ambos autores. De acuerdo con el promedio de la apertura ocular del asca, Bojórquez et al. (1919. Bojórquez RC, Maruthachalam K, McCreight DJ, Estrada JSR. Podosphaera xanthii but not Golovinomyces cichoracearum infects Cucurbits in a Greenhouse at Salinas, California. Cucurbit Genetics Cooperative Report. 2011; 33-34: 24-28.) evaluaron como promedio 19 µm en muestras de pepino (Cucumis sativus L.) contaminadas con P. xanthii. En la investigación se obtuvo similar promedio en la apertura ocular de 18,5 µm. Por lo cual, sobre la base de la descripción de las estructuras sexuales y asexuales mediante las claves de Braun y Cook (1515. Tovar PJM, Rosas SGH, García RMT, Camacho TM, Leyva MSG. Observaciones con MEB de cinco especies de Erysiphales en plantas ornamentales y frutales en el Estado de México. Rev. Scientiafungorum. 2018; 48: 33-4.), se considera a P. xanthii como el agente causal de las muestras de calabaza evaluadas con mildiu polvoriento en la región de Tehuacán.
El producto de PCR, empleando como diana el ITS con cebadores ITS1 / ITS4, reveló bandas de 500 pb, con una homología de 99 a 100 % con las secuencias de P. xanthii, registradas en NCBI GenBank. Las secuencias obtenidas se registraron en el GenBank con los números de acceso incluidos en la Tabla 2. Estos resultados indicaron la presencia de P. xanthii causando cenicilla en plantas de calabaza en las tres localidades de Tehuacán donde se tomaron las muestras. Los resultados corroboran lo notificado por Bojórquez et al. (1919. Bojórquez RC, Maruthachalam K, McCreight DJ, Estrada JSR. Podosphaera xanthii but not Golovinomyces cichoracearum infects Cucurbits in a Greenhouse at Salinas, California. Cucurbit Genetics Cooperative Report. 2011; 33-34: 24-28.), quienes amplificaron fragmentos de alrededor de 500 pb por PCR a partir de muestras de ADN fúngico, usando los cebadores ITS1/ITS4 e identificando únicamente P. xanthii como agente causal del mildiu polvoriento en calabaza y pepino (Cucumis sativus L.) en el estado de Sinaloa. Estos autores, usando los cebadores ITS1/ITS4, identificaron a P. xanthii en cucurbitáceas y Golovinomyces cichoracearum en Lactuca serriola L. PI491093 (Asteraceae), con lo cual pudieron observar que en invernadero en Salinas, California, P. xanthii es el mildiu polvoriento que infecta a las cucurbitáceas y no Erysiphe cichoracearum (G. cichoracearum), como se había informado por Lebeda et al. y Bardin et al. citados por Bojórquez et al., (1919. Bojórquez RC, Maruthachalam K, McCreight DJ, Estrada JSR. Podosphaera xanthii but not Golovinomyces cichoracearum infects Cucurbits in a Greenhouse at Salinas, California. Cucurbit Genetics Cooperative Report. 2011; 33-34: 24-28.) en cultivos de cucurbitáceas. La secuencia de la región ITS de los hongos Erysiphales tiene valor filogenético y ayuda a superar la dificultad de identificar a estos hongos, a partir de sus estructuras anamórficas ante la frecuente ausencia de las estructuras teleomórficas que se presentan esporádicamente (1313. Gastélum RF, Maldonado MIE, Beltrán PH, Apodaca SMA, Espinoza MS, Martínez VMC, Longoria ERM, Olivas PNG. Powdery mildews in agricultural crops of Sinaloa: Current status on their identification and future research lines. Rev. Mex. Fitopatología . 2017; 35:106-129., 2020. Saenz GS, Taylor JW. Phylogeny of the erysiphales (powdery mildews) inferred from internal transcribed spacer ribosomal DNA sequences. Can. J. Bot. 1999; 77: 150-168.).
La identificación molecular del agente causal del mildiu polvoriento en las áreas muestreadas de la región de Tehuacán, corroboran la identificación morfológica a través de las estructuras sexuales y asexuales, por lo que se informa a P. xanthii como agente causal del mildiu polvoriento en cultivos de calabaza en Tehuacán, México.