Se empleó la técnica de Cultivo Dual (2828. Morton DJ, Stroube WH. Antagonistic and stimulating effects of soilmicro-organism of Sclerotium. Phytopathol. 1955; 45: 417-420.) en placas Petri (Ø=90 mm), con medio de cultivo natural Agar Papa y Dextrosa, para la compatibilidad in vitro de los hongos endófitos facultativos P. chlamydosporia var. catenulata cepa IMI SD 187 (i.a. bionematicida KlamiC^®) y T. asperellum cepa Ta.13 (i.a. bioplaguicida SevetriC^®).

A partir de una colonia pura de cada cepa, se sembró un disco (Ø= 3 mm) en el extremo de cada placa Petri (Ø=80 mm), en sentidos opuestos, a una distancia de 1 cm de la periferia. Se hicieron cinco réplicas por tratamiento, consistentes en la siembra de ambos hongos juntos en las placas o de forma independiente (controles). Las placas se colocaron en una incubadora (Friocell) a 28±1ºC en oscuridad constante, por siete días. Se evaluó la antibiosis y la competencia por espacio de las colonias de ambos hongos a las 24 h, 48 h y 120 h, teniendo en cuenta el crecimiento radial lineal (mm) determinado con una regla milimetrada. La antibiosis se determinó al comparar el crecimiento del hongo en el Cultivo Dual, con el crecimiento en el control (2727. Cruz-Triana A, Rivero-González D, Infante-Martínez D, Echevarría-Hernández A, Martínez-Coca B. Manejo de hongos fitopatógenos en Phaseolus vulgaris L. con la aplicación de Trichoderma asperellum Samuels, Lieckfeldt & Nirenberg. Rev. Protección Veg. 2018; 33(3), E-ISSN: 2224-4697.). Se determinó el porcentaje de inhibición del crecimiento radial (PICR) que ejerció un hongo sobre el otro, en cada momento de evaluación, con el uso de la fórmula de Samaniego et al. (3030. Samaniego G, Ulloa S, Herrera S. Hongos del suelo antagonistas de Phymatotrichum omnivorum. Rev. Mex. Fitopatología, 1989; 8: 86-95.):

Donde, R1 es el crecimiento radial del hongo en el tratamiento control y R2 es el crecimiento radial del hongo en el Cultivo Dual.

Se realizó un análisis de varianza simple y las medias se compararon a través de la Prueba de LSD Fisher (p≤0,05), mediante el paquete estadístico InfoStat versión 2017e (3131. Di Rienzo JA, Casanoves F, Balzarini MG, González L, Tablada M, Robledo CW. InfoStat versión 2017. Grupo InfoStat, FCA, Universidad Nacional de Córdova, Argentina. Disponible en: http://www.infostat.com.ar/ ).

Los productos KlamiC^® y SevetriC^® del CENSA se aplicaron de forma independiente y combinados, en la fase de aclimatización de las vitroplantas de banano cv. ‘FHIA-03’.

En la suspensión de esporas de T. asperellum, obtenida a partir de 20 g del producto SevetriC^® en un litro de agua, se sumergieron las raíces de las vitroplantas por cinco minutos, antes de la siembra de estas en las bandejas.

Para la obtención de la suspensión de esporas de P. chlamydosporia (IMI SD 187), se agitaron manualmente, durante un minuto, 15,6 g de KlamiC^® en un litro de agua, para desprender las clamidosporas del sustrato. Posteriormente, la suspensión se filtró por una triple gasa y se vertió dentro de una mochila para aspersión de 16 L. Se realizó la aplicación por inmersión de las raíces en la suspensión de clamidosporas durante cinco minutos, previo al trasplante de las vitroplantas y, por aspersión, a los 3 y 20 días después del trasplante, donde a cada vitroplanta se les aplicó 6 ml, equivalentes a 5,6 x 10⁵ clamidosporas.vitroplanta^-1 (2222. Hernández MA, Arévalo J, Marrero D, Hidalgo-Díaz L. Efecto de KlamiC^® en la estimulación del crecimiento de vitroplantas de plátanos y bananos. Cultivos Tropicales. 2016; 37 (4): 168-172, ISSN 1819-4087, 0258-5936, DOI: 10.13140/RG.2.2.25696.69120.).

En total se conformaron 12 tratamientos, incluyendo un control absoluto sin la aplicación de los hongos endófitos. (Tabla 1)

Se utilizaron vitroplantas al concluir la Fase III; como promedio, tenían 2,88 cm en altura de la planta, 3,12 mm de diámetro del pseudotallo y 2,6 hojas activas. Las vitroplantas se sembraron en bandejas de polipropileno endurecido de 47 x 69 cm con 70 alvéolos pequeños de 5 x 5 x 5 cm, a razón de una planta por alvéolo, contentivo cada uno de 65 g de sustrato: suelo Ferralítico Rojo lixiviado (Nitisol Ródico Eútrico) y cachaza (1:3 v/v). La cachaza provino del Complejo Agroindustrial “Boris Luis Santa Coloma”, municipio Madruga, provincia Mayabeque, Cuba. Los experimentos se realizaron por triplicado (tres repeticiones por tratamiento). Las bandejas se ubicaron en el área de aclimatización con un diseño experimental de bloques al azar.

La adaptación de las vitroplantas para alcanzar la fase IV de aclimatización o endurecimiento ex vitro se realizó en condiciones de producción en la Biofábrica de la Unidad Empresarial de Semillas Mayabeque, en umbráculo semiprotegido en la cubierta y paredes, con mallas de sombreo de color negro, con 70 % de la intensidad luminosa, donde permanecieron durante 30 días. En esta fase, se aplicaron dos riegos aéreos por día, a través de un sistema de microaspersores para mantener 80 % de la capacidad de campo en el sustrato y humedad relativa ambiental entre 85-95 %.

A los 30 días, se efectuaron mediciones de las variables del crecimiento vegetativo de las plantas. Para las evaluaciones se tomaron 25 plantas de cada tratamiento al azar y se determinaron la longitud de la planta (cm), el diámetro del pseudotallo (mm), el número de hojas activas, la masa fresca y seca foliar (g), la masa fresca y seca radical (g), según describieron Hernández et al. (2222. Hernández MA, Arévalo J, Marrero D, Hidalgo-Díaz L. Efecto de KlamiC^® en la estimulación del crecimiento de vitroplantas de plátanos y bananos. Cultivos Tropicales. 2016; 37 (4): 168-172, ISSN 1819-4087, 0258-5936, DOI: 10.13140/RG.2.2.25696.69120.). Adicionalmente, se calculó el porcentaje de incremento de la media de cada indicador respecto a la media en el tratamiento control.

Se evaluó la colonización de P. chlamydosporia en el sustrato y las raíces (UFC.g^-1) mediante el método de dilución y siembra en medio semiselectivo y el conteo del número de UFC por gramo de muestra (3232. Kerry BR, Bourne JM. A Manual for Research on Verticillium chlamydosporium: A Potential Biological Control Agent for Root-Knot Nematodes Ed. International Organization for Biological Control of Noxious Animals and Plants, West Palaearctic Regional Section. 2002; 84 p. ISBN 92-9067-138-2, OCLC: 52572472.). Además, se determinó el porcentaje de colonización endofítica del hongo en las raíces, mediante la desinfección superficial con hipoclorito de sodio al 1% y siembra en medio semiselectivo (2121. Monteiro TSA, Valadares SV, de Mello INK, Moreira BC, Kasuya MCM., de Araújo JV, de Freitas LG. Nematophagus fungi increasing phosphorus uptake and promoting plant growth. Biological Control. 2018; 123: 71-75.).

Los resultados de colonización de P. chlamydosporia en suelo y raíz (UFC suelo y UFC raíces) se transformaron previamente en Log (x+1) y los porcentajes de colonización endofítica en las raíces se transformaron en Arcoseno √(x/100). Los datos de cada variable morfométrica se analizaron mediante análisis de varianza simple y se compararon los tratamientos mediante la prueba de rangos múltiples de Duncan con un nivel de significación p≤0,05. Se empleó el paquete estadístico InfoStat versión 2017e (3131. Di Rienzo JA, Casanoves F, Balzarini MG, González L, Tablada M, Robledo CW. InfoStat versión 2017. Grupo InfoStat, FCA, Universidad Nacional de Córdova, Argentina. Disponible en: http://www.infostat.com.ar/ ).

La cepa Ta.13 de T. asperellum, mostró un crecimiento más rápido que la cepa IMI SD 187 de P. chlamydosporia. Sin embargo, no se observó interacción hifal en el Cultivo Dual después de 120 h de crecimiento a 28±1ºC, momento en que el control de T. asperellum cubrió completamente el área de la placa. (Fig. 1, 2)

La inhibición del crecimiento radial se evidenció a partir de las 48 horas para ambos hongos, pero con mayor efecto sobre la cepa IMI SD 187 de P. chlamydosporia. Sin embargo, a los cinco días la inhibición de crecimiento de un hongo respecto a la del otro, mostró valores similares, con más de 40 % de inhibición. (Fig. 3)

Las cepas P. chlamydosporia (IMI SD 187) y T. asperellum (Ta.13) fueron capaces de crecer en Cultivo Dual en el medio agarizado, sin producirse el contacto directo entre ellas; es decir, cada una ocupó su propio espacio (Fig. 2). Este efecto pudo estar relacionado, fundamentalmente, a un mecanismo de antibiosis propio de ambas especies en interacción. El hongo biocontrolador T. asperellum es capaz de inhibir el crecimiento de otros hongos mediante mecanismos de acción directa y entre estos la competencia (por espacio y nutrientes), el micoparasitismo y la antibiosis (2929. Reyes Y, Martínez B, Infante D. Evaluación de la actividad antagónica de trece aislamientos de Trichoderma spp. sobre Rhizoctonia sp. Rev. Protección Veg. 2008; 23 (2): 112-117.). Esta acción de las especies de Trichoderma, previo al contacto hifal con otros hongos, se debe a la excreción de metabolitos volátiles y no volátiles, de diferentes grupos químicos, que poseen actividad fungistática y antibiótica (3333. Hernández O, Castillo D, Herrera R, Fuentes E, Drouaillet E, Santillán A. Actividad antagónica de Trichoderma spp. sobre Rhizoctonia solani in vitro. Investigación y Ciencia. 2016; 24 (67): 5-11. ).

P. chlamydosporia demostró en experimentos in vitro, que es capaz de inhibir el crecimiento de otros hongos patógenos radiculares como Fusarium oxysporum Schlechtendahl emend. Snyder y Hansen y Rhizoctonia solani (Kühn). Este hongo modificó la tasa de crecimiento de varios hongos fitopatógenos en medio de cultivo agarizado y se observó la formación de halos alrededor de la colonia del hongo nematófago y la inhibición del patógeno a distancia (3434. Monfort E. Interacciones tritróficas entre hongos nematófagos, la rizosfera y sus patógenos fúngicos. [Tesis en opción título de Doctor en Biología]. Universidad de Alicante, Alicante, España. 2004; 172 pp.). Estos resultados sugieren la síntesis y liberación de algún compuesto por parte de P. chlamydosporia, como indicaron Siddiqui y Shaukat (3535. Siddiqui IA, Shaukat SS. Combination of Pseudomonas aeruginosa and Pochonia chlamydosporia for control of root-infecting fungi in tomato. Journal of Phytopathology. 2003; 51 (a): 215-222.), quienes obtuvieron un extracto de P. chlamydosporia en cultivo líquido, capaz de inhibir el crecimiento in vitro de Macrophomina phaseolina (Tassi) Goid., F. oxysporum y Fusarium solani (Martius) Appel & Wollenweber emend. Snyder & Hansen.

Al concluir el periodo de aclimatización, a los 30 días, las vitroplantas mostraron el mayor crecimiento en los tratamientos 2 (con P. chlamydosporia) y 4 (T. asperellum), sin diferencias significativas con el tratamiento 5 (Pchlamydosporia + T. asperellum) y los tratamientos 3 y 11 (con dos aplicaciones de P. chlamydosporia), pero con diferencias significativas respecto al control y al resto de los tratamientos. Mientras que, las plantas de los tratamientos 2 y 3 con P. chlamydosporia y del tratamiento 4 con T. asperellum mostraron los mayores diámetros del pseudotallo, aunque sin diferencias significativas respecto al tratamiento 1 (control), ni a al tratamiento 5 (P. chlamydosporia + T. asperellum) o a los tratamientos 10, 11 y 12 (con P. chlamydosporia). (Tabla 2)

Al analizar el porcentaje de incremento de los tratamientos respecto al control, en relación a estas dos variables del crecimiento de las vitroplantas, se observó que los tratamientos 2, 3 y 11 (con P. chlamydosporia), el tratamiento 4 con T. asperellum y el tratamiento 5 (P. chlamydosporia + T. asperellum) lograron un incremento entre 8,4 y 13,9 % en la altura de las plantas. Mientras que, los tratamientos 2 y 3 (con P. chlamydosporia) y 4 (con T. asperellum) lograron un incremento en el diámetro del pseudotallo entre 2,5 y 12 %, respecto al control. El resto de los tratamientos no tuvo efecto de incremento sobre estas variables. (Tabla 2)

El número de hojas activas estuvo entre 3,5 y 4,76 hojas. La media mayor del número de hojas de 4,76 se obtuvo en el tratamiento 2 (con una aplicación P. chlamydosporia), sin diferencias significativas con los tratamientos 3 con 4,61 (P. chlamydosporia 2 aplicaciones) y 5 con 4,33 (P. chlamydosporia + T. asperellum), pero sí respecto al control y al resto de los tratamientos.

En los parámetros de masa fresca y seca, tanto foliar como radical, de las vitroplantas de banano ‘FHIA-03’ donde se aplicaron los agentes biológicos, los mejores valores se obtuvieron en los tratamientos 2 y 3 (con P. chlamydosporia) y el tratamiento 4 (con T. asperellum), aunque no se observaron diferencias significativas respecto al control, solamente en la masa seca foliar en el tratamiento 3 (con 2 aplicaciones de P. chlamydosporia). Con relación al control, en los tratamientos 2 y 3 con una y dos aplicaciones de P. chlamydosporia, respectivamente, se observaron incrementos respecto al control, en la masa fresca foliar, masa seca foliar y en la masa seca radical, con los mayores porcentajes en el tratamiento 2 (una aplicación). Mientras que, en el tratamiento 4 con Trichoderma (una aplicación), se observó un incremento en la masa seca radical. En el resto de los tratamientos no se observó incremento. (Tabla 3)

La colonización de P. chlamydosporia, al concluir el periodo de aclimatización a los 30 días, estuvo entre 1,43 - 6,84 x 10⁴ UFC.g^-1 de sustrato. La mayor colonización de P. chlamydosporia en el sustrato se obtuvo en el tratamiento 5 (con una aplicación de P. clamydosporia + T. asperellum) sin diferencias significativas con el tratamiento 9 (tres aplicaciones de P. clamydosporia + T. asperellum) y los tratamientos 11 y 12 (con dos y tres aplicaciones de P. chlamydosporia, respectivamente). La colonización total del hongo en las raíces de las vitroplantas de banano ‘FHIA- 03’ (AABB) estuvo entre 1,17 - 1,88 x 10⁴ UFC.g^-1 de raíz, sin diferencias significativas entre tratamientos; mientras que, el porcentaje de colonización endofítica estuvo entre 4,17 y 51,39%, los mayores valores se obtuvieron en los tratamientos 7 y 8 (con P. chlamydosporia + T. asperellum), con diferencias significativas respecto a los tratamientos 2 (con P. chlamydosporia) y 6 (P. chlamydosporia + T. asperellum) que fueron los más bajos. (Fig. 4)

La estimulación del crecimiento de las vitroplantas de banano ‘FHIA-03’ observada en algunos tratamientos, donde se inoculó uno o ambos hongos, demuestra las potencialidades de estas cepas para estimular el crecimiento vegetal y la compatibilidad entre ellas. En general, la respuesta de los tratamientos evaluados en la estimulación del crecimiento de las vitroplantas ‘FHIA-03’ indica un efecto del momento de aplicación y la forma de aplicación de estos hongos. Por otra parte, pudiera ser necesario un tiempo para el reconocimiento de estos hongos en las raíces por parte de la planta, para lograr el efecto deseado en la estimulación del crecimiento.

La inmersión de raíces parece no ser un método adecuado de aplicación de P. chlamydosporia para obtener un mejor efecto sobre el crecimiento de las vitroplantas; en general, los mejores tratamientos fueron cuando se aplicó al cuello de la planta una aplicación (3 DDT) o dos aplicaciones (3 y 20 DDT), como sugirieron Hernández et al. (2222. Hernández MA, Arévalo J, Marrero D, Hidalgo-Díaz L. Efecto de KlamiC^® en la estimulación del crecimiento de vitroplantas de plátanos y bananos. Cultivos Tropicales. 2016; 37 (4): 168-172, ISSN 1819-4087, 0258-5936, DOI: 10.13140/RG.2.2.25696.69120.). Por otra parte, este método de inmersión de raíces con T. asperellum resultó adecuado tanto cuando se aplicó de forma independiente o combinada con P. chlamydosporia. Esta forma de aplicación podría asegurar una protección temprana de las vitroplantas frente a hongos fitopatógenos. Otros estudios indican que la inoculación de estos hongos directamente al sustrato pudiera resultar en una adecuada colonización (66. Barbosa RT, Monteiro TSA, Coutinho RR, Silva JG, Freitas LG. Pochonia chlamydosporia no controle do nematoide de galhas em bananeira. Nematropica. 2019; 49(1):99-106.).

Los resultados coinciden con los obtenidos por Cassambai et al. (3636. Cassambai EL, Lekidayo L, Pocasangre LE. Uso de hongos endofíticos como promotores de crecimiento en el cultivo de banano. Revista Tierra Tropical. 2012; 8 (1): 9-18.), quienes comprobaron que, al inocular vitroplantas del cultivar ‘Gran Enano’ con hongos endofíticos, hubo un incremento significativo en la altura de las plantas, respecto a las plantas no inoculadas. Esta estimulación del crecimiento puede estar relacionada con la capacidad de P. chlamydosporia y T. asperellum para liberar de fitohormonas o metabolitos estimuladores de crecimiento de la planta o la captación de nutrientes (1111. González I, Infante D, Arias Y, Gorrita S, Hernández T, de la Noval BM, Martínez B, Peteira B. Efecto de Trichoderma asperellum Samuels, Lieckfeldt & Nirenberg sobre indicadores de crecimiento y desarrollo de Phaseolus vulgaris L. cultivar BAT-304. Rev. Protección Veg. 2019; 34(2), E-ISSN: 2224-4697., 1919. Ghahremani Z, Escudero N, Saus E, Gabaldón T, Sorribas FJ. Pochonia chlamydosporia Induces Plant-Dependent Systemic Resistance to Meloidogyne incognita. Front. Plant Sci. 2019; 10:945, DOI: 10.3389/fpls.2019.00945., 2020. Zavala-Gonzalez EA, Rodrıguez-Cazorla E, Escudero N, Aranda-Martinez A, Martınez-Laborda A, Ramırez-Lepe M, Vera A, Lopez-Llorca, LV. Arabidopsis thaliana root colonization by the nematophagous fungus Pochonia chlamydosporia is modulated by jasmonate signaling and leads to accelerated flowering and improved yield. New Phytologist. 2017; 213(1), 351-364.).

El efecto de promoción de crecimiento, en cuanto a la longitud de la planta y el diámetro del pseudotallo encontrado en la presente investigación, coincide con Barrios (3737. Barrios MA. Estudio de hongos endofíticos como inductores de resistencia para el control de sigatoka negra (Mycosphaerella fijiensis Morelet) en plátano. Tesis en opción al grado científico de Magister Scientiae en Agricultura Ecológica, Turrialba, Costa Rica. 2006: pp. 56.) quien, al analizar la promoción de crecimiento de vitroplantas de plátano, encontró diferencias significativas a favor de los hongos endofíticos, con valores mayores al testigo en altura y diámetro del pseudotallo. De igual forma, Meneses et al. (3838. Meneses A, Pocasangre LE, Somarriba E, Riveros AS, Rosales FE. Diversidad de hongos endofíticos y abundancia de nematodos en plantaciones de banano y plátano de la parte baja de los territorios indígenas de Talamanca. Agroforestería en las Américas. 2003; 10 (37-38): 59-62, ISSN 1022-7482.) demostraron que ocho semanas después de proteger plantas de banano con hongos endofíticos, estas presentaron diferencias altamente significativas en promoción de crecimiento comparadas con el testigo.

Los resultados respecto al número de hojas activas coinciden con Caballero (3939. Caballero HAJ. Uso de hongos endofíticos de Trichoderma spp. para el biocontrol del mal de Panamá (Fusarium oxisporum f. sp. cubense) raza tropical en vitroplantas del cultivar Gros Michel (AAA). Tesis en opción al grado científico de Magister Scientiae en Agricultura Ecológica. Turrialba, Costa Rica. 2011.pp. 90.), quien comprobó que varias cepas endofíticas del género Trichoderma spp., aumentaron el número de hojas de vitroplantas de banano en el cultivar ‘Gros Michel’ (AAA) con diferencias significativas sobre el control absoluto.

Los resultados obtenidos en incremento de la masa foliar concuerdan con estudios de Hernández et al. (2222. Hernández MA, Arévalo J, Marrero D, Hidalgo-Díaz L. Efecto de KlamiC^® en la estimulación del crecimiento de vitroplantas de plátanos y bananos. Cultivos Tropicales. 2016; 37 (4): 168-172, ISSN 1819-4087, 0258-5936, DOI: 10.13140/RG.2.2.25696.69120.) y Mingot-Ureta et al. (4040. Mingot-Ureta C, López-Moya F, López-Llorca LV. Worldwide strains of the nematophagous fungus Pochonia chlamydosporia are endophytic in banana roots and promote plant growth. Agronomy. 2020; 10 (9): 1299. https://doi.org/10.3390/agronomy10091299 ) donde vitroplantas de plátanos y bananos inoculadas con la cepa IMI SD 187 (=Pcat) mostraron incrementos de la masa radical y foliar, al igual que con otras cepas de P. chlamydosporia. Asimismo, aislados del género Trichoderma, incrementaron la masa de las raíces y del área foliar (55. Zum Felde A, Pocasangre L, Carñizares MCA, Riveros AS. Effect of combined inoculations of endophytic fungi on the Biocontrol of Radopholus similis in bananas. InfoMusa. 2006; 15 (1-2): 12-18, ISSN 1729-0996.).

La colonización de P. chlamydosporia IMI SD 187 en la rizosfera de las plantas de banano ‘FHIA-03’, junto con T. asperellum, indican que esta cepa es una buena competidora en la rizosfera y una buena colonizadora en plantas monocotiledóneas (2121. Monteiro TSA, Valadares SV, de Mello INK, Moreira BC, Kasuya MCM., de Araújo JV, de Freitas LG. Nematophagus fungi increasing phosphorus uptake and promoting plant growth. Biological Control. 2018; 123: 71-75.). La habilidad de colonización endofítica que posee P. chlamydosporia puede conferirle una vía de escape frente a situaciones de estrés biótico o abiótico presentes en su hábitat natural (4141. Ceiro WG. Aportes a las bases científico-técnicas para el establecimiento de Pochonia chlamydosporia var. catenulata (Kamyschko ex Barron y Onions) Zare y Gams en el manejo de Meloidogyne spp. en Sistemas de Producción Protegidos de Hortaliza. [Tesis presentada en opción al grado científico de Doctor en Ciencias Agrícolas]. Universidad Central de Las Villas Marta Abreu, Cuba. 2015; pp.98.).

Los resultados sugieren que la respuesta de estimulación del crecimiento de las plantas no estuvo relacionada con una mayor colonización de P. chlamydosporia en el suelo o las raíces y que bajos porcentajes de colonización endofítica fueron suficientes para obtener una respuesta positiva en la estimulación del crecimiento vegetal, como se observó en todos los resultados donde el tratamiento 2 con una sola aplicación de P. chlamydosporia (3 DDT). Estos resultados coinciden con los de Ceiro (4141. Ceiro WG. Aportes a las bases científico-técnicas para el establecimiento de Pochonia chlamydosporia var. catenulata (Kamyschko ex Barron y Onions) Zare y Gams en el manejo de Meloidogyne spp. en Sistemas de Producción Protegidos de Hortaliza. [Tesis presentada en opción al grado científico de Doctor en Ciencias Agrícolas]. Universidad Central de Las Villas Marta Abreu, Cuba. 2015; pp.98.) quien, con menores niveles de colonización al interior de la raíz en pimiento, alcanzó la mayor estimulación de la masa fresca radical y constató un mayor desarrollo vegetal donde se inoculó el hongo nematófago con respecto al tratamiento control.

La aplicación de una segunda dosis de KlamiC^®, 20 DDT (tratamiento 3), también produjo resultados favorables en las variables de crecimiento de las vitroplantas. Repetidas inoculaciones de P. chlamydosporia pudieran garantizar un incremento de la colonización del hongo en las raíces (4040. Mingot-Ureta C, López-Moya F, López-Llorca LV. Worldwide strains of the nematophagous fungus Pochonia chlamydosporia are endophytic in banana roots and promote plant growth. Agronomy. 2020; 10 (9): 1299. https://doi.org/10.3390/agronomy10091299 ) y, además, contribuye a asegurar el inóculo que garantice la protección temprana frente a nematodos previo a la siembra en campo (66. Barbosa RT, Monteiro TSA, Coutinho RR, Silva JG, Freitas LG. Pochonia chlamydosporia no controle do nematoide de galhas em bananeira. Nematropica. 2019; 49(1):99-106.).

Resultados obtenidos por Xue et al. (4242. Xue C, Penton CR, Shen Z, Zhang R, Huang Q, Li R, Ruan Y, Shen Q. Manipulating the banana rhizosphere microbiome for biological control of Panama disease. Scientific reports. 2015; 5, 11124.) evidenciaron que la manipulación del microbioma de la rizosfera de banano puede controlar al hongo Fusarium oxysporum f.sp. cubense raza 4; de forma tal, que P. chlamydosporia y T. asperellum como endófitos facultativos, pudieran ser interesantes agentes de control biológico para este agente fitopatógeno.

En general, los resultados evidencian que la cepa IMI SD 187 de P. chlamydosporia y la cepa Ta. 13 de T. asperellum son compatibles, como demostraron Puertas et al. (4343. Puertas AL, de la Noval B, Martínez B, Miranda I, Fernández F, Hidalgo-Díaz L. Interacción de Pochonia chlamydosporia var. catenulata con Rhizobium sp., Trichoderma harzianum y Glomus clarum en el control de Meloidogyne incognita. Rev. Protección Veg. 2006; 21(2): 80-89.). Estas cepas pudieran ocupar su espacio en la rizosfera en un mismo nicho ecológico, como ocurrió en las condiciones in vitro. P. chlamydosporia colonizó el sistema radical y la rizosfera de vitroplantas de banano cuando se aplicó de forma independiente y en combinación con T. asperellum y ambos hongos promovieron el crecimiento de las vitroplantas. Estos resultados indican que P. chlamydosporia y T. asperellum son buenos candidatos para estrategias de biomanejo en banano.

Es necesario continuar los estudios in vitro e in vivo sobre la interacción de ambos hongos como agentes de control biológico endófitos en plátanos y bananos, en aspectos relacionados con diferentes formas y dosis de aplicación, para lograr un mejor establecimiento en la rizosfera y la promoción del crecimiento de las plantas, así como el efecto sobre poblaciones de nematodos fitoparásitos o fitopatógenos y sobre la salud radical en general en estos cultivos.