Revista de Salud Animal, 38(3): 187-193, 2016, ISSN: 2224-4700

ARTÍCULO RESEÑA

INTRODUCCIÓN

El virus de la leucosis/sarcoma aviar (ALSV) es el agente causal de un grupo de tumores en aves y pertenece a la familia Retroviridae, género Alpharetrovirus. Está clasificado en distintos subgrupos acorde a las diferencias encontradas en la glicoproteína de la envoltura y al rango de hospedero que infecta. También se clasifican en exógenos y endógenos de acuerdo al modo de transmisión natural. Los AVL exógenos que afectan a los pollos se han dividido en cinco subgrupos (A,B,C,D y J) sobre la base de las características de la interferencia viral de la glicoproteína de la envoltura y las diferencias antigénicas de un patrón de neutralización cruzada (1). Los diferentes subgrupos del ALSV se han asociado con un grupo de enfermedades tumorales, principalmente en los tejidos linfoide y mieloide, así como otros problemas de reproducción en aves de corral (2). Las investigaciones dirigidas a entender la biología molecular de estos virus, así como las enfermedades que causan, se han realizado principalmente por dos grandes grupos con enfoques diferentes. El primer grupo lo componen los científicos biomédicos y su enfoque ha estado dirigido a entender la causa de las neoplasias en humanos y otros animales. El segundo grupo está formado por científicos veterinarios con el objetivo de proveer las vías de control de un grupo de desórdenes, llamados complejo de la leucosis aviar, responsable de grandes pérdidas económicas en la industria avícola. Teniendo en cuenta estos enfoques, en la primera mitad del siglo XX las investigaciones estuvieron dirigidas al reconocimiento de las enfermedades tumorales, la transmisión experimental de la enfermedad y el aislamiento viral. Durante la segunda mitad, el énfasis de las investigaciones cambió y se centraron en la replicación, la patogénesis y la biología molecular viral (3). El objetivo de esta revisión es actualizar sobres estos virus, teniendo en cuenta que en los últimos años las investigaciones sobre este género se han reducido. No ha sucedido así con el género de los Lentivirus,  en especial el virus de la inmunodeficiencia humana (VIH), el cual se usa como modelo para la replicación de la familia Retroviridae.

HISTORIA

La primera evidencia de que la enfermedad tumoral leucosis aviar tiene origen viral se mostró a inicios del siglo XX (1908) por Vilhelm Ellermann y Oluf Bang, ambos médicos, uno de humanos y el otro veterinario, mientras trabajaban en Copenhagen. Estos investigadores aislaron un agente filtrable de células sanguíneas de gallinas con leucemia eritromieloblástica que transmitieron la enfermedad a gallinas sanas a través de la inoculación del agente filtrado. Posteriormente, Ellermann obtuvo ocho cepas del ALV y ofreció una clasificación para las diferentes formas, las llamó de acuerdo al tipo de células afectadas en: leucosis eritroide, mieloide o linfoide; actualmente, esta clasificación se continúa utilizando (3). Fancis Peyton Rous, otro médico de humanos (1910), trabajando en el Instituto Rockefeller en New York, transmitió un tumor sólido (sarcoma) de gallinas enfermas a gallinas sanas a través de la inoculación de un filtrado libre de células obtenido del sarcoma de las gallinas enfermas, al que nombró virus del sarcoma de Rous (RSV). Una vez más se ponía en evidencia la presencia de un virus como agente causal de tumor. No obstante a todas estas demostraciones, en sus inicios estos descubrimientos no fueron aceptados completamente por la mayoría de los investigadores de este tema  (4, 5).

En las décadas posteriores (1960), la enfermedad llamada complejo de la leucosis aviar se convirtió en la mayor causa de mortalidad en las granjas avícolas de muchos países, principalmente en los Estados Unidos. Esto estimuló la investigación en varios laboratorios veterinarios, que trataban de entender y controlar esta condición. Al mismo tiempo, varios investigadores biomédicos trabajaban con el virus del sarcoma de Rous y los ALSV como sistemas modelos en el estudio de los virus como agentes causales de tumores. Este trabajo intenso, llevado a cabo en diferentes sectores de investigación, conllevó a que se avanzara en entender la biología molecular y la epidemiologia de estos virus, así como la edición de un gran número de publicaciones científicas. En 1966, a la edad de 87 años, 60 años después del descubrimiento realizado, a Rous le fue otorgado el premio Nobel en medicina y se le consideró el padre de la oncología viral (5, 6).

CLASIFICACIÓN Y ESTRUCTURA

Los virus de la leucosis/sarcoma aviar (ALSV) de los pollos pertenecen a la familia Retroviridae, subfamilia Orthoretrovirinae, género Alpharetrovirus, especie leucosis aviar; los mismos se encuentran divididos en seis subgrupos bien caracterizados (A-E y J). Esta clasificación se realizó teniendo en cuenta estudios de interferencia del receptor, los anticuerpos neutralizantes y el rango de hospedero (7). Además de estos subgrupos que afectan a los pollos, se han aislado otros que afectan a diferentes especies de aves, como son los subgrupos F y G, que afectan a especies de faisán (el de collar, el de cuello dorado y al Amhusrt Lady). También existen los subgrupo H e I, que afectan a la Perdiz Húngara y a la Codorniz Gambel, respectivamente (8, 9). El último subgrupo designado fue el J; este virus se aisló inicialmente en gallinas de engorde con leucosis mieloide en Inglaterra en el año 1989 (10). Los ALSV se clasifican como exógenos o endógenos, en dependencia de la forma de trasmisión natural; también se dividen en dos grupos teniendo en cuenta la presencia o ausencia de oncogenes en el genoma viral, en ligeros transformantes o agudos transformantes (11).

Los alfaretrovirus son retrovirus simples de morfología tipo C. Esta clasificación morfológica se debe a cómo se observa el núcleo del virión al microscopio electrónico (12). El ensamblaje de estos virus ocurre en la membrana plasmática de la célula que infectan y contienen un núcleo esférico interno situado simétricamente. Esta clasificación es muy útil dentro de la familia Retroviridae; el número de géneros actualmente se ha expandido teniendo en cuenta nuevos criterios (Fig. 1).  

Los criterios para clasificar las especies dentro del género Alfaretrovirus son: i) diferencias en la secuencia del genoma; ii) diferencias en las secuencias del producto del gen; iii) diferencias en el rango de hospedero natural; y iv) la presencia o ausencia de oncogenes. Por ejemplo, los aislados del ALSV pueden ser distinguidos de los del RSV debido a la ausencia de oncogenes. El rango de hospedero definido por la interacción específica del antirreceptor-receptor se usa generalmente para definir la cepa dentro de las especies (13).

La partícula viral es esférica, de un diámetro de 80-100nm, envuelta por una bicapa lipídica; la envoltura se adquiere durante la liberación de la célula infectada. Por tanto, la envoltura contiene proteínas celulares y virales (glicoproteína de la envoltura), las que le proporcionan unas proyecciones en la superficie de la partícula viral al ser observadas al microscopio electrónico. La glicoproteína de la envoltura viral está constituida por dos subunidades, una de transmembrana (TM) y la proteína de superficie (SU) presente sobre el virión. Debajo de la membrana existe una capa esférica de proteínas compuesta por la llamada proteína de la matriz (MA). Internamente se encuentra la cápside viral, constituida por la proteína de la cápside (CA) (15).

La forma y la posición de la nucleocápside se utilizan en la clasificación del género. En el centro, la partícula viral contiene las enzimas retrovirales (la reverso transcriptasa (RT), la integrasa (IN) y la proteasa (PR), juntos con el ARN cubierto por la proteína de la nucleocápside (NC), formando un complejo de ribonucleoproteína. El genoma viral es un homodímero lineal de ARN de cadena simple y polaridad positiva con cada monómero, de aproximadamente, 7Kb de tamaño (ARNsc+). De hecho, esta es una característica única de la familia Retroviridae,ya que los convierte en  los únicos virus que pueden ser considerados como “diploide”, debido a las dos moléculas idénticas de ARN. El dímero se mantiene unido por las interacciones entre los dos extremos 5’ del ARN viral en una región autocomplementaria, denominada estructura de ligamiento del dímero (DLS, de sus siglas del inglés) (16).

ORGANIZACIÓN DEL GENOMA Y REPLICACIÓN

La organización del genoma y la replicación de los ALSV es la misma que se describe de manera general para el género Retroviridae.

El tamaño del genoma infeccioso es de 7 kb y codifica para cuatro proteínas principales: proteínas Gag (actúa como antígeno específico de grupo), Pro (proteasa viral), Pol (polimerasa) y la proteína Env (proteína integral de la envoltura). El ARN genómico viral posee una caperuza tipo 1 y una cola de poli A en los extremos 5´y 3´, respectivamente, como los ARN celulares. Además de las secuencias que codifican para las proteínas enzimáticas, estructurales y reguladoras, el ARN genómico retroviral contiene una serie de secuencias que tienen importantes funciones en diferentes etapas del ciclo biológico viral. La porción 5´ del genoma contiene una región no traducida (5´ UTR) que incluye varias secuencias requeridas para la replicación viral. Esta región contiene en su extremo 5´ la secuencia R (por repetida) de 18-21 nucleótidos, ya que otra copia de esta secuencia está presente en el extremo 3´. La secuencia R es esencial para la translocación del ADN naciente desde el extremo 5 ´ al extremo 3´ del genoma durante la síntesis del ADN de la cadena negativa.

Después de la secuencia R se encuentra la región U5 (llamada así por ser única en el 5´) que incluye una de las secuencias de trinucleótidos ATT, requerida para la integración viral. Corriente abajo de esta secuencia se localiza el sitio de unión al cebador (PBS, del inglés), una secuencia de 18 nucleótidos de largo, donde el ARN de transferencia (ARNt) celular híbrida para iniciar la transcripción inversa. La secuencia continua al PBS está constituida por la estructura de unión del dímero (DLS) que contiene las secuencias utilizadas para la dimerización y empaquetamiento del ARN viral. Junto a los DLS, en sus extremos 3´ terminal, se encuentran las secuencias que codifican para las proteínas virales. Estos genes son seguidos por una secuencia corta, rica en residuos de purinas (polipurina, PPT), necesaria para el inicio de la cadena de ADN positivo. Continúa la secuencia PPT seguido por la región U3 de 150 a 250 nucleótidos, la que contiene otra secuencia ATT requerida para la integración, así como los elementos reguladores necesarios para la transcripción del provirus integrado. Detrás de esta secuencia se encuentra la copia 3´ de R, a continuación aparece la cola de poli A (Fig. 2).

El ciclo de replicación de los retrovirus está constituido por una serie de pasos que, después de la transferencia de información genética a partir del ARN a moléculas de ADN, conduce a la creación de una infección persistente con posterioridad a la integración del ADN proviral en las células huésped. Para iniciar la infección, los retrovirus interactúan con el receptor específico en la superficie de las células dianas por medio de las proteínas de la envoltura, presentes en el exterior de la membrana viral (subunidad SU). La proteína de la envoltura de los ALSV es una proteína de fusión clase I, con una subunidad de superficie N-terminal (SU) involucrada en la unión al receptor celular y una subunidad de transmembrana C-terminal que dirige la fusión de membranas; la subunidad TM contiene el péptido de fusión hidrofóbico N-terminal (18).

La entrada a la célula diana por parte de los ALSV resulta interesante, ya que utilizan un mecanismo de activación de fusión de dos pasos; uno dependiente de pH y otro independiente (19). El primer paso involucra cambios conformacionales a pH neutro de la proteína de la envoltura, que conduce a la exposición del péptido de fusión y su posterior inserción en la membrana celular. El próximo paso es dependiente de bajo pH, donde se completa la reacción de fusión de la membrana celular y viral. Posteriormente, ocurre la liberación del núcleo vírico en el citoplasma, así como proteínas accesorias necesarias para la retrotranscripción y traducción (20). Entre los diferentes ALSV existe diferencia en el receptor celular utilizado para acceder al interior celular. En el caso de los ALV-A se plantea que el mismo sea una lipoproteína de bajo peso molecular y que ALV-B, D compartan el receptor y que el mismo sea de la familia del factor de necrosis tumoral (21, 22).

Los primeros eventos siguientes a la penetración son, hasta la fecha, poco conocidos. Mientras que en algunos casos se propone que el desensamblaje del núcleo viral se produce después de la internalización, existen otros indicios que sugieren que esta cápside puede permanecer intacta, lo que permite que la transcripción inversa  se produzca confinada en este ambiente de manera segura (23).

Tras la penetración de la cápside viral en el citoplasma de la célula diana, la transcripción inversa comienza y se produce la generación de un ADN de doble hebra a partir del genoma viral de ARNsc+. Este paso característico ha dado el nombre a esta familia viral. La molécula resultante de ADN debe entonces entrar en el núcleo con el fin de integrarse en el genoma del huésped, dando lugar a un “provirus” que se establecerá de forma permanente en el huésped. La fase tardía del ciclo comprende la obtención nuevamente del ARN viral infeccioso; este paso recae, principalmente, sobre la maquinaria celular. El ARN viral se expresa a partir de su promotor, localizado en la región U3, y la regulación de la transcripción se controla por factores de transcripción celular y viral. En todos los casos se genera una transcripción de longitud completa, correspondiente al ARN viral genómico. Sin embargo, durante la fase temprana de la expresión del ADN proviral, en el proceso de transcripción se producen una serie de formas de ARN subgenómicos que son utilizados para la producción de proteínas virales (16). Luego se establece un equilibrio entre los ARN genómicos virales y las formas empalmadas (fase tardía) y conduce a la exportación del ARN genómico desde el núcleo al citoplasma, donde serán empaquetados en las partículas virales nacientes.

DISTRIBUCIÓN Y EPIDEMIOLOGÍA

En la avicultura comercial, los subgrupos A, B y J son los ALSV más comunes. El subgrupo A (ALV-A) induce, principalmente, linfocitomas y otros tipos de tumores como hemangiomas. También se han asociado con tumores subcutáneos en gallinas ponedoras jóvenes (24). El subgrupo B (ALV-B) se presenta, sobre todo, como una leucosis/sarcoma linfocítica (25). Los subgrupos C y D se han reportado poco. El subgrupo E es ubicuo, endógeno y es de baja patogenicidad (26). El subgrupo J (ALV-J) es un exógeno inicialmente causante de leucosis mieloide en pollos de engorde (27). Hasta el año 2004 no se había reportado ningún caso de infección de campo o tumor en gallinas ponedoras (28, 29). En los años recientes las granjas de ponedoras en China han experimentado brotes causados por el subtipo J y han provocado serias pérdidas económicas (30). Así, se puede apreciar que ALV-A, ALV-B y ALV-J no son solo los más comunes, sino que además son los más peligrosos para la industria avícola. Asimismo, se ha detectado coinfección por parte de ALV-A y ALV-B en pollos y gallinas ponedoras comerciales (31). Este tipo de coinfección proporciona una potencial oportunidad de ocurrencia de recombinación entre los diferentes subgrupos de los ALSV.

La transmisión natural de los ALSV ocurre por tres vías. La primera vía es la horizontal, donde la diseminación ocurre tanto por el contacto directo o con materiales infectados. Esta trasmisión, tal vez con la excepción del subgrupo J, a menudo resulta en una viremia breve. La segunda vía es mediante una infección congénita, donde el ALV  pasa de la gallina a su descendencia a través de sus huevos; a menudo resulta en pollos con viremia crónica. La tercera y última vía es de modo mendeliano.

En 1962, Rubin et al. (30) aplicaron nuevas técnicas de cultivo celular para estudiar los patrones de infección del ALV dentro de las poblaciones de aves. Ellos definieron cuatro clases serológicas de aves susceptibles: viremia, no anticuerpo (V⁺A^-); no viremia con anticuerpos (V^- A⁺); viremia con anticuerpo (V⁺A⁺); y no viremia, no anticuerpo (V^-A^-). Las aves V⁺A^- provienen de pollos infectados congénitamente y son inmunotolerantes a los ALV. Las aves V^-A⁺ son las que adquieren la infección por contacto después de la salida del cascarón. Se pensó que las V⁺A⁺  estaban infectadas por virus infecciosos unidos a anticuerpos y las V^-A^-  se cree que ocurren cuando no ha existido aún una transmisión horizontal del virus. Estos métodos de cultivo de tejido y conocimientos epidemiológicos, aunque no sirvieron para la erradicación de la infección de los ALV a escala comercial de las empresas de cría de aves de corral, fueron importantes para el desarrollo de rebaños libres de patógenos específicos para la investigación y la producción de vacunas. Esto fue posible más tarde, después de la introducción de la identificación de gallinas con una baja probabilidad de producir embriones infectados mediante pruebas con albúmina de huevo o hisopados vaginales para la detección del virus o antígeno viral (3).

DIAGNÓSTICO

Los métodos de detección existentes para los ALSV incluyen: métodos inmunoenzimáticos (ELISA), ensayos de inmunofluorescencia (IFA), aislamiento viral,  PCR en tiempo final y  PCR en tiempo real. Los ensayos de captura de antígenos (Ac-ELISA) se han empleado ampliamente y son una herramienta importante en la erradicación de los ALVS. Sin embargo, los ELISA solo detectan el antígeno grupo específico p27 y no pueden diferenciar virus endógenos de exógenos (32). Se han desarrollado ensayos de PCR en tiempo real para la detección y la diferenciación de ALV endógenos y exógenos. No obstante, ambas técnicas requieren instrumentos sofisticados y no se pueden usar ampliamente por todos los laboratorios (33).

El aislamiento viral se usa a menudo como estándar de oro. Este método tiene como inconveniente que se necesita tiempo, debido a que es requerido como mínimo siete días para obtener resultados; además este no puede diferenciar entre los diferentes subgrupos (34).

Los ensayos de PCR, usando la pareja de cebadores H5-H7 pueden detectar solamente a ALV-J, mientras que la pareja de cebadores H5-AD1 puede detectar todos los ALV excepto a ALV-J; tienen como problema que no pueden distinguir los diferentes subgrupos (35). El PCR múltiple es una técnica útil para el diagnóstico rápido y diferencial de los virus aviares y la detección de múltiples infecciones en condiciones de campo (36). Los ensayos por ELISA para los ALV exógenos, ya sea de suero o de tejido, llevan consigo la propagación del virus en fibroblastos de embrión de pollo (CEF), luego de la ruptura celular, se realiza el ensayo de ALV-Ag ELISA (37). Las muestras identificadas como positivas por el ALV-Ag ELISA requieren, posteriormente, que se determine el subgrupo exacto (A, B C, D, E o J). Estos resultados pueden lograrse a través de ensayos moleculares como la PCR.

La infección exitosa de los CEF conduce a la incorporación del ADN replicado de ALV en el genoma de estas células y puede usarse un ensayo de PCR específico para este ADN proviral para detectar la presencia de los ALV exógenos. Se han desarrollado diferentes ensayos de PCR para la detección de ARN viral y ADN proviral a partir de diferentes tipos de muestras. También se ha desarrollado PCR para la detección de contaminación de vacunas con ALVS, usando cebadores para los diferentes subgrupos A-E (38). El gen de la env de los ALV-J difiere considerablemente de los otros subgrupos y se considera que este evolucionó por recombinación con retrovirus endógenos (39). La existencia de elementos endógenos en varias líneas celulares de pollo, con un alto grado de similitud a los genes env de los ALV-J, tiene el inconveniente que pueden interferir con la amplificación específica de los genes env del ALV-J. Debido a la existencia de estos, la selección de los cebadores para la amplificación del gen de la env debe ser específica a los exógenos (27). La pareja de cebadores H7 y H5 amplifican un fragmento de 545 pb específico a ALV-J. El cebador H5 se diseñó  complementario a la región 3´ del gen de la polimerasa, que es diferente entre los subgrupos de ALV, mientras que el cebador H7se diseñó de la región conservada en la secuencia de la gp85 de un gran número de variantes de ALV-J. También existe la variante H7b, que es una ligera modificación de un cambio de una base en el cebador H7, lo que mejora la especificidad de este cebador (40).

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Recibido: 7/05/2016
Aceptado: 14/10/2016