Detección molecular de Leptospira spp. y Mycobacterium spp. en ganado bovino del municipio Los Palmitos, Sucre - Colombia

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Publicado: abr 1, 2020
Palabras clave:
bovinos, Leptospira spp., Mycobacterium spp., Dietzia, ARNr 16S, PCR

Contenido principal del artículo

Lina Lineth Durán Cueto
Universidad de Sucre
Libardo Enrique Caraballo Blanco
Universidad de Sucre
Pedro José Blanco Tuirán
Universidad de Sucre

Resumen

El objetivo de esta investigación fue detectar la presencia de Leptospira spp. y Mycobacterium spp. mediante técnicas moleculares, en ganado bovino del municipio Los Palmitos, Sucre-Colombia. Se estudiaron 172 muestras de sangre de individuos procedentes de 12 predios, las cuales se analizaron mediante la reacción en cadena de la polimerasa (PCR) con dos parejas de cebadores que amplifican una región del gen ARNr 16S de Mycobacterium spp. y la subunidad B de la ADN girasa de Leptospira spp. A partir de 35 muestras (20 %), se amplificó el segmento de interés del gen ARNr 16S y de ellas se enviaron 12 para definir su secuencia; solo ocho secuencias fueron informativas, de las cuales seis pertenecían a especies del género Dietzia y dos al género Mycobacterium. De las tres muestras positivas (1,7 %) a Leptospira spp., solo se recuperó una que mostró identidad con la especie Leptospira interrogans. Estos resultados permiten afirmar que el ganado bovino en rebaños de Los Palmitos, Sucre-Colombia, es portador de especies bacterianas que pueden generar un impacto negativo en la producción ganadera y son un riesgo para la salud humana.

Detalles del artículo

Cómo citar
1.
Durán Cueto LL, Caraballo Blanco LE, Blanco Tuirán PJ. Detección molecular de Leptospira spp. y Mycobacterium spp. en ganado bovino del municipio Los Palmitos, Sucre - Colombia. Rev. Salud Anim. [Internet]. 1 de abril de 2020 [citado 14 de noviembre de 2024];42(1). Disponible en: https://revistas.censa.edu.cu/index.php/RSA/article/view/1065
Número
Vol. 42 Núm. 1 (2020): enero-abril
Sección
ARTÍCULOS ORIGINALES

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Citas

Michel G, Reyes J, Michel H, Davila R, Rocha G, Iñiguez A, et al. Módulo de clínica de bovinos: Enfermedades bacterianas endémicas primera edición ed. Jalisco, México.2013.

Guerra M. Leptospirosis: public health perspectives. Biologicals 41: 295-297. 2013(1095-8320 ).

Betancur C, Orrego A, González M. Seroepidemiología de la leptospirosis en bovinos con trastornos reproductivos en el municipio de Montería. Rev Med Vet. 2013;(26):47-55.

Adler B, de la Pena Moctezuma A. Leptospira and leptospirosis. Veterinary microbiology. 2010.

Fornazari F, da Silva R, Richini V, Beserra H, Luvizotto M, Langoni H. Comparison of conventional PCR, quantitative PCR, bacteriological culture and the Warthin Starry technique to detect Leptospira spp. in kidney and liver samples from naturally infected sheep from Brazil. J Microbiol Methods. 2012;90(3):321-326.

Langoni H, Souza L, Silva A, Luvizotto M, Paes A, Lucheis S. Incidence of leptospiral abortion in Brazilian dairy cattle. Prev Vet Med. 1999;40:271-275.

Kazda J, Pavlik I, Falkinham J, Hruska K. The Ecology of Mycobacteria: Impact on Animal's and Human's Health. 2009.

Romero B. Tuberculosis bovina: epidemiología molecular y su implicación en Sanidad animal y Salud Píblica Madrid: Universidad Complutense de Madrid.2012.

Jelalu K, Berhanu S, Aklilu A, Yitagele T, Ketema T, Kiros W, et al. Bovine tuberculosis in eastern Ethiopia: prevalence, risk factors and its public health importance. BMC Infectious Diseases. 2019;19(1):39.

Sweetline A, Ronald B, Senthil K, Thangavelu A. Conventional and molecular determination of drug resistance in Mycobacterium tuberculosis and Mycobacterium bovis isolates in cattle.Tuberculosis (Edinburgh, Scotland).2019;114:113-118.

Iturra L. Evaluación del impacto económico de la erradicación de tuberculosis bovina en predios lecheros infectados. Chile: Universidad de Chile. 2016.

Douarre PE, Cashman W, Buckley J, Coffey A, O'Mahony JM. Isolation and detection of Mycobacterium avium subsp. paratuberculosis (MAP) from cattle in Ireland using both traditional culture and molecular based methods. Gut Pathogens.2010;2(1):11.

Dziedzinska R, Slana I. Mycobacterium avium subsp. paratuberculosis - An Overview of the Publications from 2011 to 2016. Current Clinical Microbiol Reports. 2017;4(1):19-28.

Aguilera A. Economía Regional: La Economía del Departamento de Sucre: Ganadería y Sector Público. Colombia. 2005.

Codazzi IgA. Diccionario Geográfico de Colombia Tercera edición ed. Colombia. 1996.

Miller SA, Dykes DD, Polesky HF. A simple salting out procedure for extracting DNA from human nucleated cells. Nucleic Acids Research. 1988;16(3):1215.

Tevere V, Hewitt P, Dare A, Hocknell P, Keen A, Spadoro J, et al. Detection of Mycobacterium tuberculosis by PCR Amplification with Pan-Mycobacterium Primers and Hybridization to an M. tuberculosis-Specific Probe. J Clinical Microbiol. 1996;34(4):918-923.

Slack A, Symonds M, Dohnt M, Smythe L. Identification of pathogenic Leptospira species by conventional or real-time PCR and sequencing of the DNA gyrase subunit B encoding gene. J BMC Microbiol. 2006;6:95.

Sanger F, Nicklen S, Coulson A. DNA sequencing with chain-terminating inhibitors. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 1977;74(12):5463-5467.

Kumar S, Stecher G, Tamura K. MEGA7: Molecular Evolutionary Genetics Analysis version 7.0 for bigger datasets. 2016.

Altschul S, Gish W, Miller W, Myers E, Lipman D. Basic local alignment search tool. Molecular Biology. 1990;215(3):403-410.

Kimura M. A simple method for estimating evolutionary rates of base substitutions through comparative studies of nucleotide sequences. Journal of Molecular Evolution. 1980;16(2):111-120.

Tamura K, Stecher G, Peterson D, Filipski A, Kumar S. MEGA6: Molecular Evolutionary Genetics Analysis version 6.0. Molecular biology and evolution. 2013;30(12):2725-2729.

Saitou N, Nei M. The neighbor-joining method: a new method for reconstructing phylogenetic trees. Molecular Biology and Evolution. 1987;4(4):406-425.

García P, García L. Infecciones por micobacterias de crecimiento rápido. Enferm Infecc Microbiol Clin. 2012;30(4):162-200.

Lourenço C, Whipps C, Kayoko C, Chimara E, Droz S, Tortoli E, et al. Mycobacterium saopaulense sp. nov., a rapidly growing mycobacterium closely related to members of the Mycobacterium chelonae-Mycobacterium abscessus group. Syst Evol Microbiol. 2015;65(12):4403:4409.

Camarena J, González R. Micobacterias atípicas y su implicación en patología infecciosa pulmonar. Enfermedades infecciosas y microbiologia clinica. 2011;29(5):66-75.

Wang L-T, Lee F-L, Tai C-J, Kasai H. Comparison of gyrB gene sequences, 16S rRNA gene sequences and DNA-DNA hybridization in the Bacillus subtilis group. Systematic and Evolutionary Microbiology. 2007;57:1846-1850.

Fernández M. Identificación y poder patógeno de microrganismos del género "corynebacterium" aislados de muestras clínicas. Madrid: Complutense de Madrid; 2009

Koerner R, Goodfellow M, Jones A. The genus Dietzia : a newhomefor someknownand emerging opportunist pathogens. FEMS Immunol Med Microbiol. 2009;55:296-305.

Hamid ME. Dietzia species as a cause of mastitis: Isolation and identification of five cases from dairy cattle. academic. 2013;7(29):3853-3857.

Caraballo L, Castellar A, Pardo E. Mycobacterium avium subespecie paratuberculosis en heces de bovinos del municipio de Sincelejo, Sucre, Colombia. Inv Vet Perú. 2018;29(3):987-995.

Mendoza J, Lana R, Díaz M. Mycobacterium avium subspecies paratuberculosis and its relationship with Crohn's disease. World J Gastroenterol. 2009;1r5(4).

Sweetline A, Ronald B, Kumar T, Kannan P, Thangavelu A. Molecular identification of Mycobacterium tuberculosis in cattle. Vet Microbiol. 2017;198:81-87.

Uzoigwe J, Khaitsa M, Gibbs P. Epidemiological evidence for Mycobacterium avium subspecies paratuberculosis as a cause of Crohn's disease. Epidemiol Infect. 2007;135(7):1057-1068.

Johnson M, Smith H, Joseph P, Gilman, Bautista C, Campos K, et al. Environmental Exposure and Leptospirosis. Peru Emerg Infect Dis. 2004;10(6):1016-1022.

Jafari Dehkordi A, Shahbazkia H, N. R. Evaluation of pathogenic serovars of Leptospira interrogans in dairy cattle herds of Shahrekord by PCR. Microbiol. 2011;3(3):135-139.

Britton L, Cassidy J, O'Donovan J, Gordon S, Markey B. Potential application of emerging diagnostic techniques to the diagnosis of bovine Johne's disease (paratuberculosis). Vet J. 2016;209:32-39.