Evaluación de la inmunidad poblacional contra peste porcina clásica en condiciones de endemismo de la enfermedad en Cuba
Barra lateral del artículo
Contenido principal del artículo
Resumen
La peste porcina clásica (PPC), o cólera porcino, es una enfermedad viral multisistémica, altamente contagiosa y de notificación obligatoria a la Organización Mundial de la Salud Animal (OMSA) por la amenaza de su diseminación transfronteriza. Afecta exclusivamente a los suidos domésticos y salvajes, con signos clínicos y lesionales heterogéneos, dependientes de factores del huésped, el virus y el ambiente, que complican su comportamiento epidemiológico. El endemismo prolongado de la enfermedad en Cuba y la sistemática aplicación de la vacunación con una vacuna viva, modificada de la Cepa China (producida por LABIOFAM), han propiciado procesos de selección positiva sobre las cepas circulantes, que explican su clasificación en un nuevo genotipo 1.4 y la aparición de cepas de moderada a baja virulencia, que han complicado la sospecha clínica de los casos; además de la presencia de cerdos persistentemente infectados (pre y posnatalmente), que no responden a la vacunación y eliminan constantemente virus al ambiente. En este escenario, en una provincia de Cuba se caracterizó el perfil serológico de poblaciones de cerdos de granjas tecnificadas y semitecnificadas sometidas sistemáticamente a la vacunación con la vacuna viva modificada de la Cepa China de producción nacional. La detección de anticuerpos contra el virus de PPC se realizó mediante la técnica ELISA (Enzyme-Linked Inmunoabsorbent Assay) (ELISA CSFV Ab Test IDEXX 99-43220). Se constató un bajo nivel de inmunidad poblacional en el territorio con solo 52,4 % de animales positivos de los 7502 cerdos investigados. Los cerdos para reemplazo reproductivo en las granjas genéticas mostraron el mayor porcentaje (79,27 %), incluso respecto a sus progenitores. Las cebas mostraron menor frecuencia de animales positivos respecto a los reproductores, y en general fue mayor en granjas tecnificadas (57,97 %) respecto a semitecnificadas (45,1 %). Las granjas de ciclo cerrado mostraron menor frecuencia de positivos (48,2 %) respecto a las de ciclo abierto y combinado. Los cerdos en convenios productivos semitecnificados mostraron solo 42,66 % de animales positivos y hubo diferencias en dependencia de las granjas de origen. Estos resultados pueden estar asociados tanto a la presencia de animales desprotegidos por fallos vacunales a la vacunación (33 ±3 días de edad) ante la presencia de altos títulos de anticuerpos maternales, como a un alto porcentaje de cerdos infectados pre o posnatalmente que son inmunotolerantes y no responden al inmunógeno, condiciones que favorecen el endemismo de la PPC en ese territorio y requieren la revisión de las estrategias empleadas para el control de la enfermedad. Se resalta la importancia del análisis de estos resultados a 10 años de realizada esta investigación.
Detalles del artículo
Esta obra está bajo una licencia internacional Creative Commons Atribución-NoComercial 4.0.
Aquellos autores/as que tengan publicaciones con esta revista, aceptan los términos siguientes:
- Los autores/as conservarán sus derechos de autor y garantizarán a la revista el derecho de primera publicación de su obra, el cual estará simultáneamente sujeto a la Licencia Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International (CC BY-NC 4.0) que prohíbe el uso comercial de sus publicaciones y permite a terceros compartir la obra siempre que se indique su autor y la primera publicación en esta revista. Bajo esta licencia el autor será libre de:
- Compartir — copiar y redistribuir el material en cualquier medio o formato
- Adaptar — remezclar, transformar y crear a partir del material
- El licenciador no puede revocar estas libertades mientras cumpla con los términos de la licencia
Bajo las siguientes condiciones:
- Reconocimiento — Debe reconocer adecuadamente la autoría, proporcionar un enlace a la licencia e indicar si se han realizado cambios. Puede hacerlo de cualquier manera razonable, pero no de una manera que sugiera que tiene el apoyo del licenciador o lo recibe por el uso que hace.
- NoComercial — No puede utilizar el material para una finalidad comercial.
- No hay restricciones adicionales — No puede aplicar términos legales o medidas tecnológicas que legalmente restrinjan realizar aquello que la licencia permite.
- Los autores/as podrán adoptar otros acuerdos de licencia no exclusiva de distribución de la versión de la obra publicada (p. ej.: depositarla en un archivo telemático institucional o publicarla en un volumen monográfico) siempre que se indique la publicación inicial en esta revista.
- Se permite y recomienda a los autores/as difundir su obra a través de Internet (p. ej.: en archivos telemáticos institucionales o en su página web) antes y durante el proceso de envío, lo cual puede producir intercambios interesantes y aumentar las citas de la obra publicada. (Véase El efecto del acceso abierto).
Citas
Moennig V, Floegel-Niesmann G, Greiser-Wilke I. Clinical signs and epidemiology of classical swine fever: a review of new knowledge. Vet J. 2003; 165:11-20. DOI:10.1016/S1090-0233(02)00112-0
Tarradas J, de la Torre ME, Rosell R, Perez LJ, Pujols J, Muñoz M, Muñoz I, Muñoz S, Abad X, Domingo M, Fraile L, Ganges L. The impact of CSFV on the immune response to control infection. Virus Res. 2014;185, 82-91.
Blome S, Staubach C, Henke H, Carlson J, Beer M. Classical Swine Fever-An Updated Review. Viruses. 2017; 9, 86. doi:10.3390/v9040086
van Oirschot JT. Vaccinology of classical swine fever: from lab to field. Veterinary Microbiology. 2003;96(4,7):367-384
Greiser-Wilke I, Moennig V. Vaccination against classical swine fever virus: limitations and new strategies. Anim. Hlth. Res. Rev. 2004;5:223-226.
Graham SP, Haines FJ, Johns HL, Sosan O, La Rocca SA, Lamp B, Rümenapf T, et al. Characterisation of vaccine-induced, broadly cross-reactive IFN- secreting T cell responses that correlate with rapid protection against classical swine fever virus. Vaccine. 2012;30:2742-2748.
Frías Lepoureau MT. Reemergence of Classical Swine Fever in Cuba 1993-1997. Rev Salud Anim. 2003;25(1):1-4.
Pinto Cortés J. Plan Continental para la Erradicación de la Peste Porcina Clásica de las Américas. Oficina Regional de la FAO para América Latina y el Caribe. Boletín Nº4. 2013; Octubre - Diciembre.
IMV-CENSA. Estrategia de erradicación por zonas de la peste porcina clásica en Cuba. Instituto de Medicina Veterinaria-Centro Nacional de Sanidad Agropecuaria. Informe de trabajo. 2002.
ONEI. Anuario estadístico de Cuba. Capítulo 1: Territorio. Oficina Nacional de Estadística e Información. República de Cuba. 2012. Disponible en: http://www.one.cu (Consultado: 10/12/2015).
(FAO, 2010): http://www.fao.org/docs/eims/upload/214190/ProductionSystemsCharacteristics.pdf
ArcGIS, E. 2011. Release 10.2. Redlands (CA): ESRI.
Corp, I. 2012. IBM SPSS Statistics for Windows, Version 21.0.0.0, IBM Corp Armonk, NY.
Van Bekkum JG. Experience in the Netherlands with the lapinized so-called Chinese (C) strain of vaccine. In Hog cholera/classical swine fever and african swine fever. Commission of the European Communities, Brussels. 1977:379-391.
Percedo MI, Alfonso P, Frías MT, Díaz de Arce H, Barrera M, Fonseca O, et al. Humoral response to different vaccination schemes against classical swine fever (CSF) successively applied during an outbreak of the disease. Rev Salud Anim. 2009;31:158-163.
Fonseca O, Domínguez P, Ferrer E, Fernández O, Castell S, Frías MT, et al. Respuesta humoral a dos inmunógenos contra la peste porcina clásica en condiciones de campo. Rev. Salud Anim. 2013;35(1).
Instituto de Medicina Veterinaria (IMV). Programa Nacional para la Prevención y control de la peste porcina clásica en Cuba. 2005. Documento de trabajo.
Rivera H, Angeles R, Sandoval N, Manchego A. Persistencia del virus del cólera porcino de baja virulencia en el sistema nervioso central de lechones de granjas tecnificadas. Revista de Investigaciones Veterinarias del Perú. 1999;10(1).
Coronado L, Ríos L, Frías MT, Amarán L, Naranjo P, Percedo MI, et al. Positive selection pressure on E2 protein of classical swine fever virus drives variations in virulence, pathogenesis and antigenicity: Implication for epidemiological surveillance in endemic areas. Transbound Emerg Dis. 2019;00:1-21. DOI:10.1111/tbed.13293
Elbers ARW, Stegeman A, Moser H, Ekker HM, Smak JA, Pluimers FH. The classical swine fever epidemic 1997-1998 in the Netherlands: descriptive epidemiology. Prev. Vet Med. 1999;42(3-4):157-184. DOI:10.1016/S0167-5877(99)00074-4
Elbers ARW, Bouma A, Stegeman JA. Quantitative assessment of clinical signs for the detection of classical swine fever outbreaks during an epidemic. Vet Microbiol. 2002;85:323-332.
SongJ-Y, Lim SI, Jeoung HY, Choi E-J, Hyun B-H, Kim B, et al. Prevalence of classical swine fever virus in domestic pigs in South Korea: 1999-2011. Transbound Emerg Dis. 2013; 60:546-551. DOI:10.1111/j.1865-1682.2012.01371.x
Suradhat S, Damrongwatanapokin S, Thanawongnuwech R. Factors critical for successful vaccination against classical swine fever in endemic areas. Veterinary Microbiology. 2007;(119):1-9.
Terpstra C, Wensvoort G. Influence of the vaccination regime on the herd immune response for swine fever. Vet. Microbiol. 1987;13:143-151.
Suradhat S, Damrongwatanapokin S. Factors that influenced an effectiveness of classical swine fever vaccine: a case study. Thai. J. Vet. Med. 2002;32(Suppl):163-172 (English abstract).
Suradhat S, Damrongwatanapokin S. The influence of maternal immunity on the efficacy of a classical swine fever vaccine against classical swine fever virus, genogroup 2.2, infection. Veterinary Microbiology. 2003;92(1-2):187-194. DOI:10.1016/S0378-1135(02)00357-7
Morilla González A, Carvajal Velásquez MA. La Fiebre Porcina Clásica endémica en México. Ciencia Veterinaria. 2003:165-190.
Instituto de Medicina Veterinaria (IMV). Informe anual de las actividades veterinarias y los programas de control y prevención. Informe de trabajo.
Qiu H, Shen R, Tong G. The Lapinized Chinese Strain Vaccine Against Classical Swine Fever Virus: A Retrospective Review Spanning Half A Century. Agricultural Sciences in China. 2006;5(1)1-14DOI:10.1016/s1671-2927(06)60013-
Suradhat S, Damrongwatanapokin S, Thanawongnuwech R. Factors critical for successful vaccination against classical swine fever in endemic areas. Veterinary Microbiology. 2007;(119):1-9. DOI:10.1016/j.vetmic.2006.10.003
Fonseca O, Percedo MI, Rutili D, Alfonso P, Conte A, Ferrer E, et al. Simulation model for assessing the risk of Classical Swine Fever spreading in Pinar del Río province, Cuba. 2nd Int. Conf. on Animal Health Surveillance (ICAHS2), Havana (Cuba),2014,7-9 May.
Fonseca O, Grisi-Filho JHH, Santoro KR, Alfonso P, Abeledo MA, Fernández O, et al. Network analysis of pig industry in a proposed zone for Classical Swine Fever eradication in Cuba. OIE Global Conf. on Biol. Threat Reduction. Paris, 2015a,30 June-2 July.
Fonseca O, Percedo MI, Grisi-Filho JH, Alfonso P, Abeledo MA, Fernández O, et al. Network analysis applied to classical swine fever epidemiology in Cuba. Int. Cong Eur. Soc. of Vet. Virol. (ESVV). Montpellier (France), 2015b, 31Aug-03 Sept.
Fonseca O, Santoro K, Alfonso P, Abeledo M, Fernández O, Blanco M, et al. Spatial analysis of Classical Swine Fever outbreaks in Pinar del Río province, Cuba. 14th Int Symp on Vet Epidemiol Econ (ISVEE14), Merida, Yucatan (Mexico), 2015c, 3-7 Nov.
Fonseca O, Santoro KR, Abeledo MA, Capdevila Y, Fernández O, Alfonso P, et al. Spatiotemporal distribution of classical swine fever in Cuba, 2007-2013. Rev Salud Anim. 2016;38(1):30-38.
Fonseca O, Coronado L, Amarán L, Perera CL, Centelles Y, Montano DN, et al. Descriptive epidemiology of endemic Classical Swine Fever in Cuba. Spanish Journal of Agricultural Research. 2018;16(2). DOI:10.5424/sjar/2018162-12487
Fonseca O. Caracterización espaciotemporal y factores de riesgo del comportamiento endémico de la peste porcina clásica en Cuba. (Doctoral Thesis(, Agricultural University of Havana, 2016, Cuba.
Coronado L, Bohórquez JA, Muñoz-González S, Perez LJ, Rosell R, Fonseca O, et al. Investigation of chronic and persistent classical swine fever infections under field conditions and their impact on vaccine efficacy. BMC Veterinary Research. 2019;15:247. DOI:10.1186/s12917-019-1982-x
Díaz de Arce H, Ganges L, Barrera M, Naranjo D, Sobrino F, Frias M, et al. Origin and evolution of viruses causing classical swine fever in Cuba. Virus Res. 2005;112(1-2):123-131. DOI:10.1016/j. virusres. 2005.03.018
Pérez LJ, Diaz de Arce H, Perera CL, Rosell R, Frias MT, Percedo MI, et al. Positive selection pressure on the B/C domains of the E2-gene of classical swine fever virus in endemic areas under C-strain vaccination. Infection, genetics and evolution: journal of molecular epidemiology and evolutionary genetics in infectious diseases.2012;12:1405-1412.
Postel A, Schmeiser S, Perera CL, Rodríguez LJP, Frias- Lepoureau MT, Becher P. Classical swine fever virus isolates from Cuba form a new subgenotype 1.4. Vet Microbiol. 2013;161(3-4):334-338. DOI:10.1016/j.vetmic.2012.07.045
Postel A, Pérez LJ, Perera CL, Schmeiser S, Meyer D, Meindl‐Boehmer A, et al. Development of a new LAMP assay for the detection of CSFV strains from Cuba: A proof‐of‐concept study. Archives of Virology. 2015;160:1435-1448.
Liess B. Persistent infections of hog cholera: a review. Prey. Vet. Med. 1984;2:109-113.
van Oirschot JT. Experimental production of congenital persistent swine fever infections. I Clinical, pathological and virological observations. Vet Microbiol. 1979;4:117-132.
Muñoz-González S, Perez-Simo M, Muñoz M, Bohorquez JA, Rosell R, Summerfield A, et al. Efficacy of a live attenuated vaccine in classical swine fever virus postnatally persistently infected pigs. Vet. Res. 2015; 46:78.
Cabezón O, Colom-Cadena A, Muñoz-Gonzalez S, Perez-Simo M, Bohorquez JA, Rosell R, et al. Post-natal persistent infection with classical swine fever virus in wild boar: A strategy for viral maintenance? Transbound. Emerg. Dis. 2017;64:651-655.
Weesendorp E, Backer J, Stegeman A, Loeffen W. Transmission of classical swine fever virus depends on the clinical course of infection which is associated with high and low levels of virus excretion. Vet. Microbiol. 2010.DOI:10.1016/j.vetmic.2010.06.032
Luo Y, Ji S, Liu Y, Le JL, Xia SL, Wang Y, et al. Isolation and characterization of a moderately virulent classical swine fever virus emerging in China. Transbound Emerg Dis. 2017;64:1848-1857.
Huang Y-L, Fei Pang V, Lin C-M, Tsai Y-C, Chia M-Y, Deng M-C, et al. Porcine circovirus type 2 (PCV2) infection decreases the efficacy of an attenuated classical swine fever virus (CSFV) vaccine. Veterinary Research. 2011;42:115. DOI:10.1186/1297-9716-42-115
Pérez LJ, Díaz de Arce H, Percedo MI, Domínguez P, Frías MT. First report of porcine circovirus type 2 infections in Cuba. Res. Vet. Sci. 2009;DOI:10.1016/j.rvsc.2009.11.014
Percedo MI, Domínguez P, Pérez LJ, Díaz de Arce H, Fonseca O, Castell S, et al. Efective humoral response to Classical Swine Fever E2-subunit marker vaccine candidate in Porcine Circovirus Type 2 naturally infected animals. Congreso de Enfermedades Emergentes y Reemergentes, CRESA, Barcelona, España, junio 2011
Pérez LJ, de AHD, Frias MT, Perera CL, Ganges L, Núñez JI. Molecular detection of torque Teno sus virus in lymphoid tissues in concomitant infections with other porcine viral pathogens. Res Vet Sci. 2011;91:e154-7. DOI:10.1016/J.RVSC.2011.02.01
Graham SP, Everett HE, Haines FJ, Johns HL, Sosan OA, Salguero FJ, et al. Challenge of pigs with classical swine fever viruses after C-strain vaccination reveals remarkably rapid protection and insights into early immunity. PLoS One. 2012;7, e29310. DOI:10.1371/journal.pone.0029310
Rios L, Coronado L, Naranjo‐Feliciano D, Martinez‐Pere O, Perera CL, Hernandez‐Alvarez L, et al. Deciphering the emergence, genetic diversity and evolution of classical swine fever virus. Scientific Reports.2017;7:17887.
Wei Ji, Dan-Dan Niu, Hong-Li Si, Nai-Zheng Ding, Cheng-Qiang He. Vaccination influences the evolution of classical swine fever virus. Infection, Genetics and Evolution. 2014;25:69-77. DOI:10.1016/j.meegid.2014.04.008
Yoo SJ, Kwon T, Kang K, Kim H, Kang SC, Richt JA, et al. Genetic evolution of classical swine fever virus under immune environments conditioned by genotype 1-based modified live virus. Transbound Emerg Dis. 2018;1-11.DOI: 10.1111/tbed.12798
Suárez M, Sordo Y, Prieto Y, Rodríguez MP, Méndez L, Rodríguez EM, et al. A single dose of the novel chimeric subunit vaccine E2‐CD154 confers early full protection against Classical Swine Fever virus. Vaccine. 2017;35:4437-4443, DOI:10.1016/j.vaccine.2017.05.028
Muñoz-González S, Sordo Y, Pérez-Simó M, Suarez M, Canturri A, Rodríguez MP, et al. Efficacy of E2 glycoprotein fused to porcine CD154 as a novel chimeric subunit vaccine to prevent classical swine fever virus vertical transmission in pregnant sows. Vet. Microbiol. 2012.DOI:10.1016/j.vetmic.2017.05.003
Sordo‐Puga Y, SuM, Vald PN, Pérez‐Pérez D, Santana‐Rodriguez E, Sardinas‐Gonzalez T, et al. Porvac® Subunit Vaccine E2‐CD154 Induces Remarkable Rapid Protection Against Classical Swine Fever Virus. Vaccines. 2021;9:167. DOI:10.3390/vaccines9020167
LozadaA, Estrada E, Diosdado F, Socci G, Carrera E, Arellano J, et al. Epidemiology of Classical Swine Fever outbreaks in the Central Partof Mexico. Resúmenes de International Pig Veterinary Soc. 2002;17:22.
Estrada Salmerón E, Diosdado Vargas F, Arriaga Ruiz E, Ávila Segura E, Hernández Carrillo A, Morilla González A. Evaluación de algunos factores que pudieron influir en el incremento de la fiebre porcina clásica en el Estado de México, México, durante 1997. Vet. Méx. 2001;32(1).