Caracterización de la microbiota presente en el intestino de Piaractus brachypomus (Cachamablanca)

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Publicado: ago 1, 2018
Palabras clave:
Piaractus brachypomus, cachama blanca, microbiota intestinal

Contenido principal del artículo

Liseth Paola Puello-Caballero
Universidad Nacional de Colombia
Olga Inés Montoya-Campuzano
Universidad Nacional de Colombia
Víctor Alfonso Castañeda-Monsalve
Universidad Nacional de Colombia
Luz Mary Moreno-Murillo
Universidad Nacional de Colombia

Resumen

La cachama blanca (Piaractus brachypomus) es un pez de alto valor nutritivo y comercial en Colombia; sin embargo, poco se conoce sobre su microbiota intestinal cuando se cultiva en sistemas acuícolas. Con el propósito de conocer la microbiota intestinal, se recolectaron 50 muestras de cachama en diferentes etapas: juvenil, adulta y engorde, en el municipio San Carlos, Antioquia, Colombia. A partir de las muestras de intestino se realizó recuento microbiano, aislamiento e identificación de microorganismos en diferentes medios de cultivos. Los aislados se caracterizaron e identificaron mediante el sistema API 20E (Biomeriux); se identificaron como Aeromonas hydrophila, Acinetobacter baumanii, Citrobacter youngae, Citrobacter brakii, Enterobacter cloacae, Plesiomonas shigelloides y Pseudomonas fluorescens. Se encontró que en el intestino coexisten comunidades de microorganismos pertenecientes a los Phylum Firmicutes y Proteobacteria. Estos resultados indican que este pez tiene una microbiota que puede estar sujeta a las variaciones de la alimentación y al medio ambiente circundante, entre otros factores.

Detalles del artículo

Cómo citar
1.
Puello-Caballero LP, Montoya-Campuzano OI, Castañeda-Monsalve VA, Moreno-Murillo LM. Caracterización de la microbiota presente en el intestino de Piaractus brachypomus (Cachamablanca). Rev. Salud Anim. [Internet]. 1 de agosto de 2018 [citado 25 de noviembre de 2024];40(2). Disponible en: https://revistas.censa.edu.cu/index.php/RSA/article/view/959
Número
Vol. 40 Núm. 2 (2018): mayo-agosto
Sección
ARTÍCULOS ORIGINALES

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Citas

Holguín LD, García AM, Lemus K, Ramos A, Sierra GJ, Jiménez MG. Microbiota intestinal y sus generalidades en el organismo del ser humano. Biociencias. 2018;1(2):23-31.

Sanchez JA. Caracterizacion biológica, ecológica y molecular del pez león Pterois volitans (Linnaeus, 1758) en el Caribe mexicano. [Tesis de Maestría]. Cancún, Quintana Roo, México. Centro de Investigacion Cientifica de Yucatán, AC; 2016.

Ghanbari M, Kneifel W, Domig KJ. A new view of the fish gut microbiome: Advances from next-generation sequencing. Aquaculture. 2015;448:464-475.

Núnez De la Rosa MG. Evaluación preliminar de las poblaciones bacterianas asociadas al tracto intestinal de la tilapia (Oreochromis niloticus) expuesta a aceites esenciales de orégano en la dieta. Colombia: Universidad Nacional de Colombia, Facultad de Ciencias de Bogotá, 2011.

Wang AR, Ran C, Ring E, Zhou ZG. Progress in fish gastrointestinal microbiota research. Aquaculture. 2017;0:1-15.

Llewellyn MS, Boutin S, Hoseinifar SH, Derome N. Teleost microbiomes: The state of the art in their characterization, manipulation and importance in aquaculture and fisheries. Frontiers in Microbiology. 2014;5(JUN):1-1.

Nayak SK. Role of gastrointestinal microbiota in fish. Aquaculture. 2010;41(11):1553-1573.

Ingerslev HC, Gersdorff L, Lenz M, Larsen N, Dalsgaard I, Boye M, et al. The development of the gut microbiota in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) is affected by first feeding and diet type. Aquaculture. 2014;424-425:24-34.

Clavijo Restrepo LC. Desarrollo de metodología para la determinación de la digestibilidad de materias primas no convencionales en cachama blanca Piaractus brachypomus. [Tesis de Maestría]. Palmira, Colombia: Universidad Nacional de Colombia, Facultad de ciencias agropecuarias, Escuela de Posgrado. 2011;76pp.

Landines M, Rodríguez L. Estrategias de alimentación para Cachama y Yamú a partir de prácticas de restricción alimenticia. Acuaoriente. 2011.

Díaz HA. Efecto de la fuente proteica del alimento sobre la calidad de la carne de la cachama blanca Piaractus brachypomus en un sistema de tecnología biofloc. [Tesis de Maestría]. Medellín, Colombia: Universidad Nacional de Colombia, Facultad de ciencias agrarias, Departamento de Producción Animal. 2017.

Sherwin CM, Christiansen SB, Duncan IJ, Erhard HW, Lay DC, Mench JA, et al. Guidelines for the ethical use of animals in applied ethology studies. Applied Animal Behaviour Science. 2003;81(3):291-305.

Wittwer G. Caracterización bacteriana de intestino de salmón del atlántico adulto.[Tesis de Grado]. Valdivia, Chile: Universidad Austral de Chile, Facultad de Ciencias.2012.

Ingerslev HC, Strube ML, Jørgensen L von G, Dalsgaard I, Boye M, Madsen L. Diet type dictates the gut microbiota and the immune response against Yersinia ruckeri in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Fish and Shellfish immunology. 2014;40(2):624-633.

Bergey J, HendriksD, Holt J. Bergey's manual of determinative bacteriology. Sneathy Stanley, J. T. (Eds.). The Williams and Wilkins Co. Philadelphia. 2000. p.787.

Suárez G, Del Carmen I, Saldaña G, Xavier NJ. Selección de cepa de Bacillus spp. probiótica autóctona con mayor actividad enzimática. [Tesis Doctoral]. Universidad Nacional Agraria; 2017.

Cuervo JP. Aislamiento y Caracterizacion de Bacillus spp. como fijadores biologicos de nitrogeno y solubilizadores de fosfatos en dos muestras de biofertilizantes comerciales. [Tesis de Grado]. Pontificia Universidad Javeriana Facultad de Ciencias Básicas, Carrera de Microbiología Agrícola y Veterinaria, Bogotá D.C. 2010;1-28. 35pp.

Madigan MT, Martinko JM, Parker J. Brock biology of microorganisms. 2017;13.

Sakata T, Kakimoto D. Dominant Bacteria of the Aerobic Microflora inTilapiaIntestine.pdf. Bulletin of the Japanese Society of Scientific Fisheries 50.1984;489-493.

SakataT, Sugita H, Mitsuoka T, Kakimoto D, Kadota H. Isolation and distribution of obligate anaerobic bacteria from the intestines of the freshwater fish. Bulletinof the Japanese Society of Scientific Fisheries 46. 1980;1249-1255.

Belman AGR. Efectos de inclusión de una mezcla prebiótica sobre el comportamiento productivo y la flora bacteriana en la tilapia nilótica (Oreochromis niloticus). 1999.

Lara-Flores M, Olvera-Novoa MA, Guzmán-Méndez BE, López-Madrid W. Use of the bacteria Streptococcus faecium and Lactobacillus acidophilus, and the yeast Saccharomyces cerevisiae as growth promoters in Nile tilapia (Oreochromis niloticus). Aquaculture. 2003;216(1-4):193-201.

SICA MG. Bacterias lácticas del e stuario de Bahía Blanca. Evaluación de sus propiedades probióticas para su potencial uso en el cultivo de trucha arcoíris (Oncorhynchus mykiss). 2013. p.209.

Romero J, Ringø E, Merrifield DL. Thegut microbiota of fish. Aquaculture Nutrition: Guthealth, probiotics and prebiotics. 2014;75-100.

Merrifield DL, Carnevali O. Probiotic modulation of the gut microbiota of fish. Aquaculture Nutrition: Gut Health, Probiotics and Prebiotics. 2014;185-222.

Marlli A. Uso de probióticos en la nutrición de monogástricos como alternativa para mejorar un sistema de producción. Universidad Nacional Abierta y aDistancia UNAD. 2013;p.31.

Kuz'mina VV, Skvortsova EG. Gastrointestinal bacteria and their role in digestion process in fish. Uspekhi Sovremennoi Biologii. 2002;122(6):569-579.

Hansen G, Olafsen J. Bacterial interactions in early life stages of marine cold water fish. Microbial Ecology. 1999;38(1):1-26.

Lyndon AR. Fish Growth in Marine Culture Systems: A Challenge for Biotechnology. Marine Biotechnology. 1999;1(4):376-379.

Ringø E, Strøm E, Tabachek JA. Intestinal microflora of salmonids: a review. Aquaculture Research. 1995;26(10):773-789.

Cahill MM. Bacterial flora of fishes: A review. Microbial Ecology.1990;19(1):21-41.

Banerjee G, Ray AK. Acterial symbiosis in the fish gut and its role in health and metabolism. Symbiosis. 2017;72(1):1-11.

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