Clinic-parasitologic state of young bovines and effect of anthelmintics on faecal egg counts of gastrointestinal strongilides

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Bulgan Boldbaatar
Teresa de la Caridad Meireles
Tamara Fernández
Jorge Demedio

Abstract

The aim of the study was to evaluate the clinical-parasitological condition and the effect of anthelmintics on faecal egg counts (Epg) in a cattle breeding farm in the province of Artemisa. The herd consisted of 300 animals between six and 10 months of age. The unit maintained poor quality pastures due to drought, with a predominance of species such as Paspalumnotatum and Sporobolusindicus, which are plants of low nutritional value. Soils had been restored with clayey red ferrallitic fill over stony areas. Calves were supplemented with dried sugarcane straw and a limited feed ration not exceeding 0.5 kg/day. Physical-clinical evaluation (body condition, color of conjunctiva and hematocrit value) and its relation to faecal egg counts of gastrointestinal strongylides (Gis) and their genera present were carried out in 45 animals. The effect of albendazole, ivermectin and levamisole on Epg was assessed. In those treated with ivermectin, the hematocrit value (Hct) was also evaluated. Egg counts were performed by McMaster technique and genera by L3 cultures. Body condition score 2 and 3, low mean hematocrit value and moderate parasitism were determined, with predominance of the genera Cooperia and Haemonchus. The three chemotherapeutic procedures reduced the Epg count by 98.21%, 97.93-99.98% and 100%, respectively. It is recommended to improve herd feeding, intensify the integrated control measures and apply treatments based on body condition or FAMACHA© method.

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1.
Boldbaatar B, Meireles T de la C, Fernández T, Demedio J. Clinic-parasitologic state of young bovines and effect of anthelmintics on faecal egg counts of gastrointestinal strongilides. Rev. Salud Anim. [Internet]. 2021 Jun. 2 [cited 2024 Nov. 14];43(1). Available from: https://revistas.censa.edu.cu/index.php/RSA/article/view/1133
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References

Sierra M, Flórez P, Morales E, Vásquez M, Calle M, Sierra R. Determinación de la carga parasitaria gastrointestinal en Bovinos de la zona rural de Río de Oro y el Municipio de Aguachica, Cesar, por la técnica de McMaster. Rev Fac Cienc Salud UDES. 2016;3(1.S1):20. http://dx.doi.org/10.20320/rfcsudes.v3i1.s1.p007.

Scott J. Influence of an internal Parasite Control on Cattle Grazing Behavior and Production. 2017. Master of Science. Theses, Dissertations and Student Research in Agronomy and Horticulture. 133. http//digitalcommons.unl.edu.agronhortdiss/133. University of Nebraska - Lincoln. 94 p.

Castells D, Nari A, Gayo V, et al. Fundamento epidemiológico para su diagnóstico y control. En: Fiel C, Nari A. 1ra. Edición, Montevideo. Ed. Hemisferio Sur, pp.151-174;2013.

Kotze AC, Prichard RK. Anthelmintic resistance in Haemonchus contortus: History, mechanisms and diagnosis. Adv Parasitol. 2016;93:397-428.

Buss Baiak BH, Lehnen CR, da Rocha RA. Anthelmintic resistance in cattle: A systematic review and meta-analysis. Livestock Science 2018;21:127-135. https://doi.org/10.1016/j.livsci.2018.09.022.

Russell W, Avramenko EM, Redman L, et al. Deep amplicon sequencing as a powerful new tool to screen for sequence polymorphisms associated with anthelmintic resistance in parasitic nematode populations. Int J Parasit 2019;49(1):13-26.

Galicia G, Villarreal A, Guerrero C, et al. Ivermectin effectiveness for gastrointestinal nematode control in donkeys (Equus asinus) in the Mexican High Plateau. Rev Mex Cienc Pecu 2020;11(2):326-341. https://doi.org/10.22319/rmcp.v11i2.5100.

Morales G, Pino LA, Sandoval E, Jiménez D, Morales J. Relación entre la condición corporal y el nivel de infestación parasitaria en bovinos a pastoreo como criterio para el tratamiento antihelmíntico selectivo. Rev Inv Vet Perú 2012;23(1):80-89.

Figueroa C, Mancebo O, Scribano V, et al. Efecto del consumo de Leucaena leucocephala sobre la carga parasitaria de terneros destetados con pastoreo directo. Rev Vet. 2019;30:32.

Pereira JF, Mendes JB, De Jong G, et al. FAMACHA© scores history of sheep characterized as resistant/resilient or susceptible to H. contortus in artificial infection challenge. Vet Parasitol. 2016;218:102-105. doi: 10.1016/j.vetpar.2016.01.011

Zárate D, Rojas J, Segura A. Validación del Método FAMACHA© para dosificación antihelmíntica Selectiva en rebaños caprinos lecheros. Rev Inv Vet Perú. 2017;28(1):150-159.

Rossanigo C, Page W. 2017. Evaluación de FAMACHA© en el control de nematodos gastrointestinales en cabras de San Luis (Argentina). Rev InvAgrop. 2017;43(3):239-246.

Klein B. Fisiología Veterinaria de Cunningham. Editorial Fotoletra S.A. pp. 66-67. España; 2014.

Aucay DI. Aplicación de la técnica FAMACHA para el diagnóstico parasitológico de los bovinos de la hacienda “Mahanaim” del cantón Sucúa. Trabajo de Titulación. Escuela Superior Politécnica de Chimborazo. Ecuador. 87 p; 2017.

Rizzon MC, Ollhoff RD, Weber SH, et al. Is the Famacha© system always the best criterion for targeted selective treatment for the control of haemonchosis in growing lambs? DOI 10.1016/j.vetpar.2018.12.015.

Álvarez J, Armenteros M, Delgado A, et al. Tecnologías Agropecuarias. Asociación Cubana de Producción Animal. p. 20. ISBN 978-959-7207-05-4. La Habana, Cuba; 2012.

Pinilla JC, Flórez P, Sierra M, et al. Prevalencia del parasitismo gastrointestinal en bovinos del departamento Cesar, Colombia. Rev Inv Vet Perú. 2018;29(1):278-287.

Arece, J. Identificación y comportamiento de los estrongilidos gastrointestinales de los ovinos en Matanzas, Cuba. Tesis PhD. CENSA. La Habana. pp. 10-14; 2005.

IMV (Instituto de Medicina Veterinaria). Programa de control de enfermedades parasitarias gastrointestinales y pulmonares del bovino. Centro Nacional de Parasitología. San Antonio de los Baños, Artemisa, Cuba. p. 2; 2014.

Mencho JD, Guerra Y, Padilla L, et al Eficacia antihelmíntica de la Ivermectina 1% (Labiomec®) en rebaños ovinos de Camagüey, Cuba. Rev Salud Anim. 2013;35(2):134-136.

Soca M, Simón L, Roque E. Árboles y nematodos gastrointestinales en bovinos jóvenes: un nuevo enfoque de las investigaciones. Pastos y Forrajes, 2007;30 (número especial):21-23.

Paixão A, Walter A, Esperança S, et al. (2015). Identification of the genera Haemonchus, Trichostrongylus, Oesophagostomum, Ostertagia and Cooperia in goats in the province of Huambo-Angola. Rev Salud Anim. 2015;37(1):64-68.

Johansson L. The impact of gastrointestinal parasites on weight gain, activity patterns and behaviours in cattle on pasture. Swedish University of Agricultural Sciences. Course title: Degree project in Animal Science. Course code: EX056. Agricultural science programme - Animal Science. ISSN: 1682-280X. Online publication: http://stud.epsilon.slu.se. Skara, Sweden. 38 p; 2017.

Craig TM. Gastrointestinal nematodes, diagnosis and control. Vet Clin N Am Food Anim Pract 2018;34(1):185-199.

Zwanenburg L. Sustainable control of gastrointestinal parasite infections in ruminants. A dissertation submitted to Ghent University in partial fulfillment of the requirements for the degree of Master of Veterinary Medicine. Ghent University. Belgium. 65 p; 2018.

Baltrušis P, Halvarsson P, Höglund J. Molecular detection of two major gastrointestinal parasite genera in cattle using a novel droplet digital PCR approach. Parasitol Res. 2019;118: 2901-2907. https://doi.org/10.1007/s00436-019-06414-7.

Andresen CE, Loy DD, Brick TA., et al Effects of extended-release eprinomectin on productivity measures in cow-calf systems and subsequent feedlot performance and carcass characteristics of calves. Transl Anim Sci. 2019;3:274-287. doi: 10.1093/tas/txy115.

Villar C. Efectos del parasitismo gastrointestinal sobre la nutrición en vacunos. Rev Prod Anim Colombia. 2006;34:23-27.

Puicón VH. Evaluación de la resistencia natural a nematodos gastrointestinales en alpacas y ovinos en praderas de la puna central del Perú. Tesis MSc. Universidad Nacional Agraria La Molina. Lima, Perú. 107 p; 2018.

Carosio AJ. Estudio comparativo del comportamiento biológico de aislamientos de Haemonchus contortus resistente y susceptible a los antihelmínticos en corderos infectados experimentalmente. Tesis MSc. Universidad Nacional de Mar del Plata. Argentina. 102 p; 2019.

Benavides MV, Sonstegard TS, Kemp S, et al. Identification of novel loci associated with gastrointestinal parasite resistance in a Red Maasai x Doper backcross population. Plos One 10: e0122797; 2015.

Radostits O, Gay C, Blood D, et al. Medicina Veterinaria. 9a ed. España: McGraw-Hill Interamericana. 2 215 p; 2002.

Decia L, Peralta MM. Evaluación y validación del método FAMACHA© como estrategia de dosificación en corderos (Ovis aries) en otoño. Tesis de Titulación. Universidad de la República. Uruguay. 55 p; 2016.

Mederos A, Banchero G. Parasitosis gastrointestinales de ovinos y bovinos: situación actual y avances de la investigación. Programa Nacional de Producción de Carne y Lana. Sitio Argentino de Producción Animal. Rev INIA. 2013;34:10-15.

Díaz AM, Arias HA, García DJ, et al. Estimación de los Valores de Hematocrito y Hemoglobina en Presencia de Haemonchus ssp. en Ovinos de Oicatá, Colombia. Rev Fac Cs Vets - UCV. 2014;55(1):18-24.

Rodríguez JG, Arece J, Olivares JL, et al. Antihelmínticos, resistencia y método FAMACHA. Experiencia cubana en ovinos. Rev Salud Anim. 2015;37(1):57-63. ISSN: 2224-4700.

Caicedo YA, de Melo J, Ribeiro de Lima R, et al. Economic evaluation and efficacy of strategic-selective treatment of gastrointestinal parasites in dairy calves. Braz J Vet Parasitol, Jaboticabal. 2017;26(2):123-128. Doi: http://dx.doi.org/10.1590/S1984-29612017020.

ACPA (Asociación Cubana de Producción Animal). Pastos y Forrajes. Asociación Cubana de Producción Animal. pp. 165-175. ISBN 978-959-7202-10-8. La Habana, Cuba; 2012.

Ortiz C. Evaluación de la aplicación de eprinomecina e ivermectina, para el control nematodos gastrointestinales de ovejas de pelo, en finca San Julián, Patulul, Suchitepéquez, Guatemala, durante la época de invierno. Tesis de Titulación. Universidad de San Carlos de Guatemala. 46 p; 2013.

Lamb J, Elliot T, Lamber M, Chick B. Broad spectrum anthelmintic resistance of Haemonchus contortus in Northern NSW of Australia. Vet Parasitol. 2017;241:48-51.

Cerutti J, Cooper L, Torrents J, et al. Eficacia reducida de derquantel y abamectina en ovinos y caprinos con Haemonchus spp. resistentes a lactonas macrocíclicas. Rev Vet. 2018;29(1):22-45.

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