Sperm quality of sheep encapsulated semen, stored for three days at two different temperatures
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Abstract
Semen encapsulation may be an alternative to conventional methods of semen preservation, contributing to the efficiency of artificial insemination by maintaining sperm motility and viability for extended periods of time, but these characteristics of encapsulated semen have generally been determined for 24 hours. The research was aimed at evaluating the sperm quality of sheep encapsulated semen stored refrigerated or at room temperature for 24, 48 and 72 h. The ejaculates obtained were diluted and divided into three portions for the groups: control (refrigerated semen), refrigerated encapsulated semen (SE-R) and encapsulated semen at room temperature (SE-TA). Capsules were made with sodium alginate (0.5 %) and BaCl2 (50 mM). According to the results, the control group obtained the best values in progressive motility and viability during the study. Motility evaluations among encapsulated semen showed that SE-R obtained higher percentage than SE-TA during 72 h of storage (p<0,05). Moreover, SE-R motility was similar to that of the control group (p>0,05) at 48 h and 72 h of storage, respectively. In terms of viability, SE-R was the only group that maintained the proportion of live spermatozoa during storage period from 24 to 72 hours (p>0,05). Accordingly, SE-R maintained progressive motility and viability for a longer storage time and can be an alternative in IA programs, where it is necessary to extend the fertilizing capacity of the sperm.
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References
Thiangthientham P, Suwimonteerabutr J, Tharasanit T, Techakumphu M. The optimal divalent cations and storage temperatures for the encapsulation of ram spermatozoa. Thai J Vet Med. 2020;50:89-96.
Pérez E, Gutiérrez J, Lavin P, Mantecon A. Factores condicionantes de la fertilidad en inseminación artificial en ovejas de Assaf Española: edad de la inseminación, días postparto, producción de leche y concentración de urea en leche. Tierras. 2019;28:56-63.
Copari J. Efecto del tipo de presentación de celo sobre tasas de preñez y natalidad post inseminación artificial en ovejas Corriedale, Merino y Criollas del C. E. Chuquibanbilla-Puro. Tesis para optar el título de Médico Veterinario Zootecnista. Perú. 2021. [en línea] http://repositorio.unap.edu.pe/bitstream/handle/UNAP/15121/Copari_Lope_Jhon_Brajan.pdf?sequence=1&isAllowed=y
Cáceres D. Factores que dificultan la inseminación artificial en la especie ovina y su correlación con las tasas de fertilidad, preñes y parto. Revisión sistemática de literatura. Universidad de Colombia. 2019. [en línea] https://repository.ucc.edu.co/bitstream/20.500.12494/8120/1/2019_Factores_inseminaci%C3%B3n_artificial.pdf
Valenzuela C, Hernández V, Rodríguez F, Carrillo R. Tecnología de encapsulación y su aplicación en ciencias veterinarias. Av Cienc Vet. 2013;28:58-75.
Aranda A. Maduración de ovocitos equinos por encapsulación. Tesis para obtener el título de Médico Veterinaria. Facultad de Veterinaria. Universidad de Zaragoza. España. 2017. [en línea] https://zaguan.unizar.es/record/58026/files/TAZ-TFG-2016-4602.pdf
Weber W, Rimann M, Schafroth T, Witschi U, Fussenegger M. Desing of high throughput compatible protocols for microencapsulation, cryopreservation and release of bovine spermatozoa. J Biotechnol. 2006;123:155-163.
Faustini M. New aspects of boar sperm encapsulation. Reprod Dom Anim. 2011;46:52-54.
Faustini M, Torre M, Villani S, Munari E, Conte U, Riccardi A, et al. Barium alginate controlled release capsules for stallion spermatozoa delivery. In International Workshop on Bioencapsulation & COST Meeting. 2006:215-217.
Perteghella S, Gaviraghi A, Cenadelli S, Bornaghi V, Galli A, Crivelli B, et al. Alginate encapsulation preserves the quality and fertilizing ability of mediterranean Italian wáter buffalo (Bubalus bubalis) and Holstein Friesian (Bos taurus) spermatozoa after cryopreservation. J Vet Sci. 2017;18:81-88.
Parraguez H, Blank O, Muñoz C, Latorre E. Inseminación artificial en ovinos. Monogr Med Vet. 2000;20.
Guillén M. Preñez en ovejas Dohne Merino por inseminación artificial con dos dilutores y tiempos de refrigeración. Cienc Desarro. 2019;18:50-57.
Porras A, Páramo M. Manual de Prácticas de Reproducción Animal. México: FMVZ UNAM. 2009:74-88.
Spinaci M, Bucci D, Chlapanidas T, Vallorani C, Perteghella S, Communod R, et al. Boar sperm changes after sorting and encapsulation in barium alginate membranes. Theriogenology. 2013;79:575-581.
Wayne D, Chad C. Biostatistics: A Foundation for Analysis in the Health Sciences. United States of America: WILEY. 2013:161-213.
Rojas L. Análisis de los criterios de percepción sobre la calidad de la carne de ovino de los transformadores de Capulhuac, Estado de México. Tesis para obtener el título de Médico Veterinario Zootecnista, Universidad Autónoma del Estado de México. 2020. http://ri.uaemex.mx/bitstream/handle/20.500.11799/109093/Tesis%20Versi%C3%B3n%20Final.%20Luis%20Manuel%20Rojas%20Gonz%C3%A1lez%2022-06-2020.pdf?sequence=1
Muñoz A. Correlación de la circunferencia escrotal con volumen de eyaculado y concentración espermática en cuatro razas ovinas. Tesis para obtener el título de Medico Veterinaria Zootecnista. Universidad Autónoma del Estado de México. México. 2019. [en línea] http://ri.uaemex.mx/bitstream/handle/20.500.11799/110406/Tesis_%20Alma%20Sofia%20sin%20dedi%20y%20agra.pdf?sequence=5
Paredes J. Efectos de la temperatura, humedad e índice temperatura-humedad sobre la calidad seminal de carneros. Tesis para obtener el título de Medica Veterinaria Zootecnista. Universidad Autónoma del Estado de México, Estado de México, México. 2019. [en línea] http://ri.uaemex.mx/bitstream/handle/20.500.11799/110461/Tesis%20Jocelyn_Efectos%20de%20la%20temperatura%2C%20humedad%20e%20%C3%ADndice%20temperatura-humedad%20sobre%20la%20calidad%20seminal%20en%20carneros_removed.pdf?sequence=7
Pabón H, Pulido M. Circunferencia escrotal como criterio de selección para carneros de reemplazo. Pensam Acci. 2021;31:52-73.
Lakde C, Patil M, Sahatpure S, Gawande A, Umesh K. Standard protocol for encapsulation of canine semen. Int J Sci Environ Technol. 2018;7:1296-1300.
Faustini M, Torre M, Stacchezzini S, Norberti R, Consiglio A, Porcelli F, et al. Boar spermatozoa encapsulated in barium alginate membranes: a microdensitometric evaluation of some enzymatic activities during storage at 18°C. Theriogenology. 2004;61:173-184.
Huamanñahui A. Evaluación del dilutor TRIS con yema de huevo de codorniz antes y después de la congelación de espermatozoides epididimarios de toros criollos postmortem. Tesis para obtener el grado de Médico Veterinario Zootecnista. Universidad Nacional Micaela Bastidas de Apurimac. Perú. 2017. [en línea] http://repositorio.unamba.edu.pe/bitstream/handle/UNAMBA/657/T_0383.pdf?sequence=1
Shah S, Nagano M, Yamashita Y, Hishinuma M. Microencapsulation of canine sperm and its preservation at 4°C. Theriogenology. 2010;73:560-567.
Falchi L, Galleri G, Zedda M, Pau S, Bogliolo L, Ariu F, et al. Liquid storage of ram semen for 96 hours: effects on kinematic parameters, membranas and DNA integrity, and ROS production. Livest Sci. 2018;207:1-6.
Perteghella S, Vigani B, Crivelli B, Spinaci M, Galeati G, Bucci D, et al. Sperm encapsulation from 1985 to date: technology evolution and new challenges in swine reproduction. Reprod Dom Anim. 2015;50:98-102.
Gangwar C, Kharche S, Mishra A, Saraswat S, Kumar N, Sikarwar A. Effect of diluent sugars on capacitation status and acrosome reaction of spermatozoa in buck semen at refrigerated temperature. Trop Anim Health Prod. 2020;52:3409-3415.