Premisas para la toma, envío de muestras e interpretación de resultados de diagnóstico parasitológico en aves

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Daisy Rodríguez García
Yenisey García Ferrer

Resumen

La presente contribución tuvo como objetivo establecer las premisas para realizar la toma, conservación y envío de muestras para el diagnóstico parasitológico en aves; así como para la correcta interpretación de los resultados emitidos por el laboratorio. Los países tropicales reúnen las condiciones climáticas ideales para el desarrollo de los parásitos, sus formas de dispersión y hospederos intermediarios durante todo el año, por lo que las afectaciones parasitarias son muy frecuentes. Se han reportado pérdidas en la producción de carne y huevo cuando existen altas infestaciones de parásitos en las aves de producción. La base de cualquier programa de control lo constituye un acertado diagnóstico, pero a su vez, este último depende de la correcta toma y envío de muestras. Igualmente se necesita la correcta interpretación de los resultados del laboratorio por parte del personal veterinario de las granjas, de manera tal que puedan implementar las medidas efectivas para el control de las parasitosis. Esta situación se agrava al tener en cuenta el incremento acelerado de la resistencia antiparasitaria en los últimos años. Bajo estas condiciones es necesario comprender la importancia del control estratégico de parásitos y plagas, que no implica la erradicación de los mismos sino mantener pequeñas poblaciones que no ocasionen daños perceptibles en la salud y el comportamiento productivo de los animales mediante la utilización inteligente de los antiparasitarios. Estos resultados nos conducirán a obtener diagnósticos confiables, y proporciona elementos que permitirán el uso estratégico de los antiparasitarios disponibles.

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1.
Rodríguez García D, García Ferrer Y. Premisas para la toma, envío de muestras e interpretación de resultados de diagnóstico parasitológico en aves. Rev. Salud Anim. [Internet]. 21 de febrero de 2024 [citado 28 de septiembre de 2024];45:https://cu-id.com/2248/v45e16. Disponible en: https://revistas.censa.edu.cu/index.php/RSA/article/view/1243
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García Y, Rodríguez D, Simón P. Behavior of Helminthes in Laying Hens during the Period 2014-2017. Multidisciplinary Advances in Veterinary Science. 2018; 2 (3): 341-347. doi: https://scientiaricerca.com/srmavs/SRMAVS-02-00052.php. ISSN: 2573-3435.

Lakyat A, Pumnuan J, Thipmanee K. Ectoparasite species attacking chicken in eastern area of Bangkok, Thailand. International Journal of Agricultural Technology 2022. 18(4): 1619-1632 Available online http://www.ijataatsea.com ISSN 2630-0192 (Online).

Bulman GM, Lamberti JC. Parásitos y enfermedades parasitarias emergentes y reemergentes: Calentamiento global, cambio climático, transmisión y migración de especies. Evaluación de la participación del hombre. Vet Argentina. 2011; 28 (282): 1-15.

Rodríguez JG, Olivares J, Sánchez Y, Alemán Y, Arece J. Cambios climáticos y su efecto sobre algunos grupos de parásitos. Rev. Salud Anim. 2013; 35 (3): 145-150.

Rodríguez D. Toma, envío de muestras e interpretación de los resultados de parasitologíaen aves. VIII Jornada Científica Nacional de Avicultura, 28- 30 mayo. La Habana, Cuba; 2019.

Yazwinski TA. Hoglund J, Permín A, Gauly M, Tucker C. World association for the advencement of veterinary parasitology (WAAVP) of guidelines for evaluating the efficacy of antihelmintics in poultry. Veterinary Parasitology. 305 (2022) 109711 https://doi.org/10.1016/j.vetpar.2022.109711.

Rodríguez GD, García FY, Valdés FL, Correoso MO, González NM, Valdés RM. Evaluación de alfacipermetrina para el control de ácaros en gallinas ponedoras en condiciones de laboratorio. Rev Inv Vet Perú. 2021; 32 (3): e20404. doi: https://dx.doi.org/10.15381/rivep.v32i3.20404.

Toderaş I, Zamornea M, Rusu T, Erhan D, Savin A, Chihai O, Gliga O, Cuantificarea unor indici biochimici i productivi la fazanii infesta i cu ectoparaziţi. Boletinul AŞM. Ştiinţele vieţii.2019; 2(338): 112-117.

Simón P, Rodríguez D, Correoso O, González G. Presencia del piojo Neocolpocephalum turbinatum en gallinas ponedoras. Rev Cubana Cienc Avíc. 017; 41: 5-8.

Torres-Cabra E, Lagos-López MI. Evaluación del aceite esencial de cilantro (Coriandrum sativum L.) sobre el ácaro rojo de aves Dermanyssus gallinae (De Geer, 1778) (Acari: Dermanyssidae) bajo condiciones de laboratorio. Cienc Tecnol Agropecuaria, Mosquera (Colombia). 2019; 20: 53-60. doi: http://

www.scielo.org.co/pdf/ccta/v20n1/0122-8706-ccta-20-01-00053.pdf

Sleeckx N, Van GS, Koopman R, Kempen I, Van HK, De BK, et al. Producction losses in laying hens during infestation with the poultry red mite Dermanyssus gallinae. Avian Pathology. 2019; 48. doi: https://doi.org/10.1080/03079457.2019.

Hernández M, Lamarrendy R, Szczypel B, Morales Y, Temprana M. Evaluación de la efectividad de Bacillus thuringiensis cepa LBT-13 frente ctoparásitos de la gallina doméstica en una granja de ponedoras. Revista Cubana de Ciencia Avícola. 2007; 31:119-126.

Rodríguez GD, Larramendy R, Varona E, Colás M, Reinaldo O, Villa JR, et al. Comportamiento de los parásitos externos en aves (Gallus gallus) de diferentes líneas puras. Revista Cubana de Ciencia Avícola. 2015; 39 (2): 5-12.

Mahdavi Fard V, Shariati Sharifi F, Ganjali M, Jahantigh M, Lopez-Aban J. Identification of ectoparasites of ornamental birds in the north of Sistan and Baluchestan (southeast Iran). Iranian Journal of Veterinary Science and Technology. 2020; 12, (2): 68-72. DOI: 10.22067/veterinary.v12i2.87675

Villalobos-Moreno A, Vera-Valdivieso DC, Hoyos-García W, Michel P. Valim MP, ArcilaQuiceno VH. Ectoparasites of Coragyps atratus (Bechstein, 1793) (Accipitriformes: Cathartidae) on Bucaramanga, Santander, Colombia. Bol.cient.mus.hist.nat. 2020; 24 (2): 231-243. ISSN: 0123-3068 (Impresed) ISSN: 2462-8190 (On line)

Rodríguez-Ortega LT, Equihua-Martínez A, Nieto-Aquino R, Pro-Martínez A, RodríguezOrtega A. Nota científica: Infestación de piojos (Phthiraptera) en gallinas, gallos y pollos (Gallus gallus domesticus, Linnaeus). Folia Entomológica Mexicana (nueva serie). 2018; 4 (2): 80−84.

Yarto JE, Romero NC, Alvarez ZM, Cruz LE, Rangel DJ, Miranda CL, Galicia FE. Use of afoxolaner for the treatment of lice (Goniodes pavonis) in different genera de faisanes (Chrysolophus spp., Lophura spp., Phasianus spp and Syrmaticus spp) and species of pheasants and West Mexican chachalacas (Ortalis poliocephala). Veterinary Parasitology. 2020. 280, 09065. https://dx.doi.org/10.1016/.vetpar.2020.109065

García FY, Rodríguez GD. Piojos Neocolpocephalum turbinatum en patos Pekín (Anas platyrhynchos domesticus) en la provincia Artemisa, Cuba. Revista de Investigaciones Veterinarias del Perú. 2020; 31 (2): 17852.

Sánchez A y Lamazares MC. Principales enfermedades que afectan a las aves. En: Sánchez A, López A, Sardá R, Pérez M, et al. (eds). Salud y producción de las aves. La Habana: UNAH; 2010. p. 212.

Harrington D, George DR, Guy JH, Sparagano O. Opportunities for integrated pest management to control the poultry red mite, Dermanyssus

gallinae. World´s Poultry Science Journal. 2011; 68 (3): 435-446.

Nari A, Eddi CS. Control de la resistencia a los antiparasitarios a la luz de los conocimientos actuales. Sitio Argentino de Producción Animal [http://www.Producción-animal.com.ar.] 2002 [Consultado 23 septiembre de 2019].

Lozano J, Anaya A, Salinero AP, Lux -Hoppe EG; Gomes L, Paz-Silva A, et al. 2019. Gastrointestinal parasites of free-range chickens: A worldwide issue. Bulletin UASVM Veterinary Medicine. 2019; (76): 2.

Martínez LR, Sosa P, Juliano R, Centurión LM. Evaluación de la infestación por endoparásitos en una población aviar paraguaya. Actas Iberoamericanas de Conservación Animal. 2022; (17):49-58.

Maia SO, dos Santos Candido MJ, Martins IV, Boeloni JN, Marin JF. Esclarecendo o diagnóstico parasitológico em aves domésticas: atualidades e perspectivas. Tópicos Especiais em Ciência Animal. 2020; (9): 130. https://ciencias veterinarias.ufes.br/sites/cienciasveterinarias.ufes.br/files/field/anexo/topicos_especiais_em_ciencia_animal_ix_2020_0.pdf#page=132. (Consulta: 28 de marzo de 2023).

Feitosa LM, Pinto PWC, Silva ÊC, Araújo LRS. Helmintoses em aves (Gallus gallus) sob diferentes sistemas de produção. Revista Brasileira ultidisciplinar. 2021; 24(3): 244-253.

Rodríguez JG, Olivares OJ, Cortez S, Larramendy R, Gómez E, Blandino T. Métodos para el trabajo con los helmintos más importantes en Medicina Veterinaria. Colección Salud Animal. 2002; (4). EDICENSA: 67

Jeffers TK. Comparación de la eficacia de un programa anticoccidiósico. Rev. Selecciones Avícolas. 2012; 54 (4): 13-16.

Del Cacho E, Pagès M. Coccidiosis: la enfermedad, consecuencias y tratamiento. Rev. Selecciones Avícolas. 2014; 56 (2): 13-17.

Rodríguez GD, García FY, Simón P, Valdés L, Correoso O, Díaz MO. Comportamiento de la circulación de coccidiosis en diferentes propósitos de Gallus gallus. Rev. Cubana de Ciencia Avícola. 2019; 43 (1): 19-24.

Dinev I. Enfermedades de las aves. Atlas a color. 2da edición. Stara Zagora, Bulgaria: Ediciones CEVA; 2011.

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