Detección de microorganismos de la clase Mollicutes asociados al complejo respiratorio-reproductivo en caballos de Mayabeque, Cuba

Barra lateral del artículo

PDF HTML XML EPUB
Publicado: dic 1, 2019
Palabras clave:
Acholeplasma, diagnóstico, equino, Mollicutes, Mycoplasma

Contenido principal del artículo

Ania Ramón-Martínez
Centro Nacional de Sanidad Agropecuaria
Fulgencio Pupo-Batista
Universidad Agraria de La Habana
Lisset Roblejo-Arias
Centro Nacional de Sanidad Agropecuaria
Adrian Díaz Sánchez
Centro Nacional de Sanidad Agropecuaria
Ileana Miranda-Cabrera
Centro Nacional de Sanidad Agropecuaria
Belkis Corona González
Centro Nacional de Sanidad Agropecuaria
Evelyn Lobo-Rivero
Centro Nacional de Sanidad Agropecuaria

Resumen

Las investigaciones sobre la detección de micoplasmas en caballos son relativamente escasas; sin embargo, existen reportes sobre su asociación al complejo respiratorio-reproductivo. En Cuba se desconoce sobre la presencia de estos microorganismos en caballos, por lo que el objetivo de este trabajo fue detectar la presencia de microorganismos de la clase Mollicutes asociados al complejo respiratorio-reproductivo en caballos procedentes de San José de las Lajas, Mayabeque. Para esto se trabajaron 97 animales procedentes de cuatro localidades de este municipio. Se colectaron 131 exudados (97 nasales y 34 prepuciales) para el diagnóstico por cultivo microbiológico y PCR. En 37,11 % de las muestras se detectó la presencia de Mollicutes; de ellas 88,8 % correspondieron a exudados nasales y 11,2 % a exudados prepuciales. En todas las localidades se detectó la presencia de Mollicutes; la localidad “D” y los animales mayores de dos años fueron los de mayor número de resultados positivos. Se obtuvo un aislado procedente de exudado prepucial, el cual se identificó por pruebas bioquímicas, como Acholeplasma spp. Por primera vez en Cuba se realizan estudios relacionados con la presencia de Mollicutes en caballos, por lo que resulta necesario continuar los estudios relacionados con la epidemiología de estos patógenos, como parte del control del complejo respiratorio-reproductivo en esta especie.

Detalles del artículo

Cómo citar
1.
Ramón-Martínez A, Pupo-Batista F, Roblejo-Arias L, Díaz Sánchez A, Miranda-Cabrera I, Corona González B, Lobo-Rivero E. Detección de microorganismos de la clase Mollicutes asociados al complejo respiratorio-reproductivo en caballos de Mayabeque, Cuba. Rev. Salud Anim. [Internet]. 1 de diciembre de 2019 [citado 25 de noviembre de 2024];41(3). Disponible en: https://revistas.censa.edu.cu/index.php/RSA/article/view/1039
Número
Vol. 41 Núm. 3 (2019): septiembre-diciembre
Sección
ARTÍCULOS ORIGINALES

Aquellos autores/as que tengan publicaciones con esta revista, aceptan los términos siguientes:

  1. Los autores/as conservarán sus derechos de autor y garantizarán a la revista el derecho de primera publicación de su obra, el cual estará simultáneamente sujeto a la Licencia Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International (CC BY-NC 4.0) que prohíbe el uso comercial de sus publicaciones y permite a terceros compartir la obra siempre que se indique su autor y la primera publicación en esta revista. Bajo esta licencia el autor será libre de:
  • Compartir — copiar y redistribuir el material en cualquier medio o formato
  • Adaptar — remezclar, transformar y crear a partir del material
  • El licenciador no puede revocar estas libertades mientras cumpla con los términos de la licencia

Bajo las siguientes condiciones:

  • Reconocimiento — Debe reconocer adecuadamente la autoría, proporcionar un enlace a la licencia e indicar si se han realizado cambios. Puede hacerlo de cualquier manera razonable, pero no de una manera que sugiera que tiene el apoyo del licenciador o lo recibe por el uso que hace.
  • NoComercial — No puede utilizar el material para una finalidad comercial.
  • No hay restricciones adicionales — No puede aplicar términos legales o medidas tecnológicas que legalmente restrinjan realizar aquello que la licencia permite.
  1. Los autores/as podrán adoptar otros acuerdos de licencia no exclusiva de distribución de la versión de la obra publicada (p. ej.: depositarla en un archivo telemático institucional o publicarla en un volumen monográfico) siempre que se indique la publicación inicial en esta revista.
  2. Se permite y recomienda a los autores/as difundir su obra a través de Internet (p. ej.: en archivos telemáticos institucionales o en su página web) antes y durante el proceso de envío, lo cual puede producir intercambios interesantes y aumentar las citas de la obra publicada. (Véase El efecto del acceso abierto).

Citas

Cordova C, Hoeltgebaum DL, Machado L, Dos Santos L. Molecular biology of mycoplasmas: from the minimum cell concept to the artificial cell. Annals of the Brazilian Academy of Sciences. 2016:599-607.

Nocard R. The microbe of pleuropneumonia. 1896. Rev Infect Dis. 1990;12(2):354-358.

Johansson KE, Pettersson B. Taxonomy of Mollicutes. In: Razin R, editor. Molecular Biology and Pathogenicity of Mycoplasmas. USA: Springer.2008. p. 29.

Champoux J, Neidhardt F, Drew LD, Plorde JJ. Sherris Medical Microbiology: An Introduction To Infectious Diseases. 4TH ed. Ray KJRyCG, editor. 2004. 409-13 p.

Bradbury J. Micoplsamas aviares: situación epidemiológica actual, bioseguridad y diagnóstico. 2007:6.

Fernández-Molina C, Rodríguez-Preval N, Rodríguez-González I, Agnese-Latino M, Rivera-Tapia JA, Ayala-Rodríguez I. Diagnóstico de Mycoplasma genitalium por amplificación de los genes MgPa y ARN ribosomal 16S. Salud Pública de México. 2008;50(5):358-61.

Razin S, Hayflick L. Highlights of mycoplasma research - An historical perspective. Biologicals. 2010;38(2):183-190.

Manual de la Organización Mundial de Sanidad Animal (OIE). 2015.

Informe semestral de la Dirección de Sanidad Animal, MINAG. 2017.

Spergser J, Aurich C, Aurich JE, Rosengarten R. High prevalence of mycoplasmas in the genital tract of asymptomatic stallions in Austria. Vet Microbiol. 2002;87(2):119-129.

Mete A, Özgür NY. Investigation of the presence of Mycoplasma as an etiologic agent of inflammatory airway diseases in thoroughbred racehorses in Istanbul Province. Turk J Vet Anim Sci. 2017;41:365-371.

Malik P, Chahota R, Bhardwaj B, Gupta S, Sharma M. A Study on the Prevalence of Mycoplasma spp. in the Upper Respiratory Tract of Healthy and Diseased Equines in Himachal Pradesh. 2016; p. 31.

Losinno L, Córdoba ML, Fumuso E. Infecciones de transmisión sexual (ITS) en equinos. 2016;1-32.

Nehra K, Rana R, Viswas KN, Arun TR, Singh VP, Singh AP, et al. Isolation and molecular identification of Mycoplasma equigenitalium from equine genital tracts in northern India. Iran J Vet Res. 2015;16(2):176-181.

Poveda JB. Biochemical Characteristic in Mycoplasma identification. In: Miles RJ, Nicholas RA, editors. Methods in Molecular Biology. Totowa, New Jersey, U.S.A: Humana Press. Inc.; 2010; p. 69-79.

Razin S, Tully J, Rose D, Barile M. DNA cleavage patterns as indicators of genotypic heterogeneity among strains of Acholeplasma and Mycoplasma species. J Gen Microbiol. 1983;129(6):1935-1944.

Freundt E. Culture media for classic mycoplasmas. Methods in mycoplasmology. 1983;1:127-35.

Fernández C, Chávez Y. Aplicación de la Reacción en Cadena de la Polimerasa para la detección de micoplasmas en cultivos celulares. Rev Salud Anim. 1999;18(1):31-34.

van Kuppeveld FJ, Johansson KE, Galama JM, Kissing J, Bolske G, van der Logt JT, et al. Detection of mycoplasma contamination in cell cultures by a mycoplasma group-specific PCR. Applied Environmental Microbiol. 1994;60(1):149-152.

European Pharmacopoeia 8.0, section 2.6.7. Mycoplasmas. 2014.

Molla KV, Shokrgozar MA, Arabestani MR, Moghadam MS, Azari S, Maleki S, et al. PCR-based detection and eradication of mycoplasmal infections from various mammalian cell lines: a local experience. Cytotechnology. 2009;61(3):117-124.

Castillo YIM. COMPAPROP: Sistema para comparación de proporciones múltiples. Rev Protección Veg. 2014;29(3):231-234.

Carman S, Rosendal S, Huber L, Gyles C, McKee S, Willoughby RA, et al. Infectious agents in acute respiratory disease in horses in Ontario. Journal of veterinary diagnostic investigation: official publication of the American Association of Veterinary Laboratory Diagnosticians, Inc. 1997;9(1):17-23.

Antal T, Szabo I, Antal V, Vajda G, Polner A, Totth B, et al. Respiratory disease of horses associated with Mycoplasma infection. Zentralblatt fur Veterinarmedizin Reihe B J Vet Med, Series B. 1988;35(4):264-270.

Hasselbring BM, Sheppard ES, Krause DC. P65 Truncation Impacts P30 Dynamics during Mycoplasma pneumoniae Gliding. J Bacteriol. 2012;194(11):3000-3007.

Pilo P, Vilei EM, Peterhans E, Bonvin-Klotz L, Stoffel MH, Dobbelaere D, et al. A metabolic enzyme as a primary virulence factor of Mycoplasma mycoides subsp. mycoides small colony. J Bacteriol. 2005;187(19):6824-6831.

Dieckmann SM, Winkler M, Groebel K, Dieckmann MP, Hofmann-Lehmann R, Hoelzle K, et al. Haemotrophic Mycoplasma infection in horses. Vet Microbiol. 2010;145(3-4):351-353.

Baczynska A, Fedder J, Schougaard H, Christiansen G. Prevalence of mycoplasmas in the semen and vaginal swabs of Danish stallions and mares. Vet Microbiol. 2007;121(1-2):138-143.

Pereyra NB, Pérez AM, Messick JB, Cane FD, Guglielmone AA. Estudio de factores de riesgo asociados a la infección por Mycoplasma suis. InVet. 2010;12(2):121-130.

Waites KB, Katz B, Schelonka RL. Mycoplasmas and ureaplasmas as neonatal pathogens. Clin Microbiol Rev. 2005;18(4):757-789.

Volokhov DV, Graham LJ, Brorson KA, Chizhikov VE. Mycoplasma testing of cell substrates and biologics: Review of alternative non-microbiological techniques. Mol Cell Probes. 2011;25(2-3):69-77.

Brown DR. Phylum XVI. Tenericutes. In: De Vos P, G. Garrity, D. Jones, N.R. Krieg, W. Ludwig, F.A. Rainey, K.H. Schleifer y W.B. Whitman, editor. Bergey's Manual(r) of Systematic Bacteriology: Volume Four The Bacteroidetes, Spirochaetes, Tenericutes (Mollicutes), Acidobacteria, Fibrobacteres, Fusobacteria, Dictyoglomi, Gemmatimonadetes, Lentisphaerae, Verrucomicrobia, Chlamydiae, and Planctomycetes: Springer-Verlag New York. 2010; p. 976.

Lobo E. Mollicutes de interés en Medicina Veterinaria. Monografías. 2004.

Kirchhoff H, Naglic T, Heitmann J. Isolation of Acholeplasma laidlawii and Mycoplasma equigenitalium from stallion semen. Vet Microbiol. 1979;4:177-179.

Artículos más leídos del mismo autor/a

> >>