Perfil de susceptibilidad antimicrobiana en cepas de micoplasmas contaminantes en cultivos celulares

Contenido principal del artículo

Evelyn Lobo-Rivero
Anisleidy Pérez Castillo
Ania Ramón-Martínez
Michel Báez Arias
Ivette Espinosa-Castaño

Resumen

En los cultivos celulares, los antibióticos se utilizan en el control de las contaminaciones por micoplasmas. La resistencia antimicrobiana de estos microorganismos aumentan considerablemente en los últimos años y los antibióticos de elección, como las quinolonas, los aminoglucósidos y las tetraciclinas, disminuyen su efectividad. El objetivo de este trabajo fue determinar los perfiles de susceptibilidad en cepas de micoplasmas contaminantes en cultivos celulares. Para esto se utilizaron 11 cepas de micoplasma, obtenidas del diagnóstico de contaminaciones en cultivos celulares y caracterizadas previamente por pruebas bioquímicas y genéticas. Se determinó la Concentración Mínima Inhibitoria (CMI) de las cepas frente a nueve agentes antimicrobianos que se utilizan en el trabajo rutinario con cultivos celulares y contra especies de micoplasma contaminantes. Los aislados mostraron susceptibilidad a tetraciclinas: minociclina (rango de CMI: 0,25-0,5 μg/mL) y oxitetraciclina (rango de CMI: 1-2 μg/mL) y al macrólido: tilosina (rango de CMI: 0,25-1 μg/mL); mientras que evidenciaron moderada resistencia a quinolonas: enrofloxacina (rango de CMI: 4-8 μg/mL) y ciprofloxacina (rango de CMI: 4-8 μg/mL). Un total de 10/11 cepas mostraron resistencia a los aminoglucósidos: neomicina (rango de CMI: 8-16 μg/mL), gentamicina (rango de CMI: 8-32 μg/mL), kanamicina (rango de CMI: 8-32 μg/mL) y estreptomicina (rango de CMI: >64 μg/mL). La resistencia antimicrobiana de los micoplasmas debe ser continuamente monitoreada con vista a minimizar los cambios en la susceptibilidad y mantener eficacia antimicrobiana frente a la contaminación.

Detalles del artículo

Cómo citar
1.
Lobo-Rivero E, Pérez Castillo A, Ramón-Martínez A, Báez Arias M, Espinosa-Castaño I. Perfil de susceptibilidad antimicrobiana en cepas de micoplasmas contaminantes en cultivos celulares. Rev. Salud Anim. [Internet]. 1 de abril de 2020 [citado 24 de noviembre de 2024];42(1). Disponible en: https://revistas.censa.edu.cu/index.php/RSA/article/view/1066
Sección
ARTÍCULOS ORIGINALES

Citas

Fader CM, Medero A, Furlán M, Colombo MI, editors. Observación de Mycoplasma spp. por microscopía electrónica, tratamiento, eliminación y confirmación por PCR anidada. 10th Inter-American Congress on Electron Microscopy (CIASEM 2009). 2009.

Razin S, Yogev D, Naot Y. Molecular biology and pathogenicity of mycoplasmas. Microbiol Mol Biol Rev. 1998;62(4):1094-1156.

Rivera-Tapia JA, Cedillo-Ramírez ML, Vega-Benítez M. Micoplasmas y su importancia médica. Rev Biomed. 2001;12(4):262-271.

Fagundo-Sierra R, Sánchez-Saínz A, Pérez-Jáuregui J. Resistencia in vitro de aislamientos clínicos de Mycoplasma hominis y Ureaplasma urealyticum en México. Bioquímica. 2006;31(4):124-131.

Waites KB, Katz B, Schelonka RL. Mycoplasmas and ureaplasmas as neonatal pathogens. Clin Microbiol Rev. 2005;18(4):757-789.

Hilliard NJ, Duffy LB, Crabb DM, Waites KB. In vitro comparison of agar and microbroth dilution methods for determination of MICs for Mycoplasma hominis. J Microbiol Meth. 2005;60:285-288.

Hirose K, Kawasaki Y, Kotani K, Abiko K, Sato H. Characterization of a point mutation in the parC gene of Mycoplasma bovirhinis associated with fluoroquinolone resistance. Journal of veterinary medicine B. InfectDis Vet Pub Health. 2004;51(4):169-175.

Taroco R, Seija V, Vignoli R. Métodos de estudio de la sensibilidad antibiótica. Temas de Bacteriología y Virología médica. Mexico. 2006. p. 663-671.

Hannan PC. Guidelines and recommendations for antimicrobial minimum inhibitory concentration (MIC) testing against veterinary mycoplasma species. Vet Res. 2000;31(4):373-395.

Ross JE, Scangarella-Oman NE, Flamm RK, Jones RN. Determination of disk diffusion and MIC quality control guidelines for GSK2140944, a novel bacterial type II topoisomerase inhibitor antimicrobial agent. Journal of clinical microbiology. 2014;52(7):2629-2632.

Sader HS, Pignatari AC. E test: a novel technique for antimicrobial susceptibility testing. Sao Paulo Med J. 1994;112(4):635-638.

Medvedeva ES, Baranova NB, Mouzykantov AA, Grigorieva TY, Davydova MN, Trushin MV, et al. Adaptation of Mycoplasmas to Antimicrobial Agents: Acholeplasma laidlawii Extracellular Vesicles Mediate the Export of Ciprofloxacin and a Mutant Gene Related to the Antibiotic Target. The Scientific World Journal. 2014:1-7.

Pérez A. Detección y caracterización de contaminaciones por micoplasmas en cultivos celulares y productos biotecnológicos. (Tesis en Opción al Grado de Master en Microbiología, Mención Bacteriología-parasitología(. Centro Nacional de Sanidad Agropecuaria. 2017.

Clinical and Laboratory Standards Institute (CLSI). Analysis and Presentation of Cumulative Antimicrobial Susceptibility TestData; Approved Guideline. Fourth Edition.CLSI document M39-A4. CLSI, Wayne,Pennsylvania, USA, 2016.

Tully JG, Razin S. Methods in Mycoplasmology. 2 ed. New York and London: Academic Press. 1983.

CVMP. Guidelines for environmental impact assessment for veterinarymedicinal products. EMEA/CVMP/ERA/4182/2005-corr. EMEA, London.2007.

Van Bambeke F, Michot JM, Van Eldere J, Tulkens PM. Quinolones in 2005: an update. Clin Microbiol Infect. 2005;11(4):256-280.

Duque A, Peréz A, Espinosa I, Lobo E. Resistencia antimicrobiana de aislados cubanos de Mycoplasma gallisepticum. Rev Salud Anim. 2017;39(1):28-34.

Antunes NT. Mecanismos de resistencia a las quinolonas en Mycoplasma mycoides subsp. mycoides LC. España: Universidad de Las Palmas de Gran Canaria. 2007.

Prasad E, Lim-Fong R. Mycoplasma detection and elimination. Abstract Book of 14th International Congress of the International Organization of Mycoplasmology (IOM). 2002; Viena, Austria.

Ogawa M, Uchiyama T, Satoh M, Ando S. Decontamination of mycoplasma-contaminated Orientia tsutsugamushi strains by repeating passages through cell cultures with antibiotics. BMC Mmicrobiol. 2013;13:32.

Hannan PC. Antibiotic susceptibility of Mycoplasma fermentans strains from various sources and the development of resistance to aminoglycosides in vitro. J Med Microbiol. 1995;42(6):421-428.

Meng DY, Sun CJ, Yu JB, Ma J, Xue WC. Molecular mechanism of fluoroquinolones resistance in Mycoplasma hominis clinical isolates. Braz J Microbiol. 2014;45(1):239-242.

Raherison S, Gonzalez P, Renaudin H, Charron A, Bébéar C, Bébéar CM. Evidence of active efflux in resistance to ciprofloxacin and to ethidium bromide by Mycoplasma hominis. Antimicrob Agents Chemother. 2002;46(3):672-679.

Perlman D, Rahman SB, Semar JB. Antibiotic control of Mycoplasma in tissue culture. Appl Microbiol. 1967;15(1):82-85.

Jin LY, Hyoung-Joon M, Bo-Kyu K, Man KJ, Wan-Kyu L. In vitro antimicrobial susceptibility of Mycoplasma hyorhinis field isolates collected from swine lung specimens in Korea. J Swine Health Prod. 2014;22(4):193-196.

Gautier-Bouchardon AV. Antimicrobial Resistance in Mycoplasma spp., Microbiol Spectrum 6(4):ARBA-0030-2018. doi:10.1128/microbiolspec.ARBA-0030-2018.

Cord C. Uphoff, Sabine-A. Denkmann, Hans G. DrexlerTreatment of Mycoplasma Contamination in Cell Cultures with PlasmocinJournal of Biomedicine and Biotechnology 2012, 8 pages doi:10.1155/2012/26767.

Soehnlen MK, Kunze ME, Karunathilake KE, Henwood BM, Kariyawasam S, Wolfgang DR, et al. In vitro antimicrobial inhibition of Mycoplasma bovis isolates submitted to the Pennsylvania Animal Diagnostic Laboratory using flow cytometry and a broth microdilution method. Journal of veterinary diagnostic investigation : official publication of the American Association of Veterinary Laboratory Diagnosticians, Inc. 2011;23(3):547-551.

Wu CC, Shryock TR, Lin TL, Faderan M, Veenhuizen MF. Antimicrobial susceptibility of Mycoplasma hyorhinis. Vet Microbiol. 2000;76(1):25-30.

Artículos más leídos del mismo autor/a

> >>