Efecto de la aplicación conjunta de Pochonia chlamydosporia (Goddard) Zare y Gams y Trichoderma asperellum Samuels, Lieckfeldt y Nirenberg en vitroplantas de banano (Musa sp.)

Contenido principal del artículo

Jersys Arévalo Ortega
Benedicto Martínez Coca
Miguel A. Hernández Socorro
Rolisbel Alfonso de la Cruz
Danay Ynfante Martínez
Leopoldo Hidalgo-Díaz

Resumen

El objetivo de este trabajo fue evaluar la combinación in vitro y ex vitro de P. chlamydosporia (IMI SD 187) y Trichoderma asperellum (Ta. 13) en la aclimatización de vitroplantas del banano de cocción del tipo Bluggoe (AABB) ‘FHIA-03’. Primeramente, se determinó la compatibilidad in vitro, mediante la competencia por espacio (crecimiento radial) y el porcentaje de inhibición del crecimiento a las 24, 48 y 120 h en Cultivo Dual. Posteriormente, se evaluó la aplicación de estos hongos de manera independiente o en combinación, durante la fase de adaptación ex vitro de vitroplantas, y un control sin aplicación; en total 12 tratamientos. Las vitroplantas se plantaron en bandejas de polipropileno de 70 alvéolos con sustrato: suelo ferralítico rojo lixiviado y cachaza (1:3 v/v). P. chlamydosporia cepa IMI SD 187 (Bionematicida KlamiC®) se aplicó con T. asperellum cepa Ta.13 (Biofungicida SevetriC) mediante inmersión de raíces previo al trasplante, o por aspersión a los 3 y 20 días posteriores al trasplante. Las bandejas se distribuyeron al azar en el área de aclimatización. A los 30 días, se evaluó el crecimiento de las vitroplantas y la colonización de P. chlamydosporia en el sustrato y las raíces. In vitro, T. asperellum creció más rápido que P. chlamydosporia, pero no hubo contacto hifal directo entre ambos hongos. P. chlamydosporia colonizó el sistema radical y la rizosfera de las vitroplantas cuando se aplicó de forma independiente y en combinación con T. asperellum y ambos hongos promovieron el crecimiento vegetal. Los resultados indican que P. chlamydosporia y T. asperellum son buenos candidatos para estrategias de biomanejo en banano.

Detalles del artículo

Cómo citar
Arévalo Ortega, J., Martínez Coca, B., Hernández Socorro, M. A., Alfonso de la Cruz, R., Ynfante Martínez, D., & Hidalgo-Díaz, L. (2021). Efecto de la aplicación conjunta de Pochonia chlamydosporia (Goddard) Zare y Gams y Trichoderma asperellum Samuels, Lieckfeldt y Nirenberg en vitroplantas de banano (Musa sp.). Revista De Protección Vegetal, 36(1). Recuperado a partir de https://revistas.censa.edu.cu/index.php/RPV/article/view/1122
Sección
ARTÍCULOS ORIGINALES

Citas

Perrier X, De Langhe E, Donohue M, Lentfer C, Vrydaghs L, Bakry F, Careel F, Hippolyte I, Horry J, Jenny C, Lebot V. Multidisciplinary perspectives on banana (Musa spp.) domestication. Proceedings of the National Academy of Sciences. 2011; 108(28): 11311-11318.

Oficina Nacional de Estadística e Información de la República de Cuba (ONEI). 2019. Anuario estadístico de Cuba. Edición enero - diciembre 2020.

Davies LJ, Elling AA. Resistance genes against plant-parasitic nematodes: a durable control strategy? Nematology. 2015; 17(3), 249-263.

Diepens NJ, Pfennig S, Van den Brink PJ, Gunnarsson JS, Ruepert C, Castillo L. Effect of pesticides used in banana and pineapple plantations on aquatic ecosystems in Costa Rica. Journal of Environmental Biology. 2014; 35(349 especial):73-84.

Zum Felde A, Pocasangre L, Carñizares MCA, Riveros AS. Effect of combined inoculations of endophytic fungi on the Biocontrol of Radopholus similis in bananas. InfoMusa. 2006; 15 (1-2): 12-18, ISSN 1729-0996.

Barbosa RT, Monteiro TSA, Coutinho RR, Silva JG, Freitas LG. Pochonia chlamydosporia no controle do nematoide de galhas em bananeira. Nematropica. 2019; 49(1):99-106.

Zakaria L, Jamil MIM, Anuar ISM. Molecular characterisation of endophytic fungi from roots of wild banana (Musa acuminata). Tropical Life Sciences Research. 2016; 27(1), 153-162.

Pocasangre L, Schuster P, Sikora RA, Vilich V. Survey of banana endophytic fungi from Central America and screening for biological control of Radopholus similis. En: Blanke M., Pohlan J. (eds). ISHS Conference on Fruit Production in the Tropics and Subtropics. DE. Bonn. 2000; 283-289.

Kaushal M, Swennen R, Mahuku G. Unlocking the Microbiome Communities of Banana (Musa spp.) under Disease Stressed (Fusarium wilt) and Non-Stressed Conditions. Microorganisms. 2020; 8, 443; doi:10.3390/microorganisms8030443.

Martínez B, Infante D, Reyes Y. Trichoderma spp. y su función en el control de plagas en los cultivos. Rev. Protección Veg. 2013; 28 (1): 1-11.

González I, Infante D, Arias Y, Gorrita S, Hernández T, de la Noval BM, Martínez B, Peteira B. Efecto de Trichoderma asperellum Samuels, Lieckfeldt & Nirenberg sobre indicadores de crecimiento y desarrollo de Phaseolus vulgaris L. cultivar BAT-304. Rev. Protección Veg. 2019; 34(2), E-ISSN: 2224-4697.

Hernández D, Rodríguez MG, Peteira B, Miranda I, Arias Y, Martínez B. Efecto de cepas de Trichoderma asperellum Samuels, Lieckfeldt y Nirenberg sobre el desarrollo del tomate y Meloidogyne incognita (Kofoid y White) Chitwood. Rev. Protección Veg. 2015; 30 (2) 139-147. ISSN: 2224-4697.

Manzanilla LRH, Esteves I, Finetti SMM, Hirsch PR, Ward E, Devonshire J, Hidalgo-Díaz L. Pochonia chlamydosporia: Advances and Challenges to Improve its Performance as a Biological Control Agent of Sedentary Endo-parasitic Nematodes. Journal of Nematology, 2013; 45(1): 1-7.

Ciancio A, Colagiero M, Rosso Pentimone LC, López-Cepero J. A metagenomic study of banana nematode antagonists in Canary Islands. Symposium of chemical and integrated management of nematodes. 51th ONTA annual meeting, Costa Rica. Nematropica. 2019: 330-331.

Ceiro-Catasú WG, Hidalgo-Viltres M, Hidalgo-Díaz L, Arévalo-Ortega J, García-Bernal M, Mazón-Suástegui JM. Establecimiento in vitro del hongo nematófago Pochonia chlamydosporia var. catenulata en diferentes suelos. Terra Latinoamericana. 2021; 39: 1-7. e792, DOI: 10.28940/terra.v39i0.792.

Zavala-Gonzalez EA, Escudero N, Lopez-Moya F, Aranda-Martinez A, Exposito A, Ricaño-Rodríguez J, Naranjo-Ortiz MA, Ramírez-Lepe M, Lopez-Llorca LV. Some isolates of the nematophagous fungus Pochonia chlamydosporia promote root growth and reduce flowering time of tomato. Annals of Applied Biology. 2015: 10, ISSN 0003-4746.

Maciá-Vicente JG, Jansson HB, Mendgen K, López-Llorca LV. Colonization of barley roots by endophytic fungi and their reduction of take-all caused by Gaeumannomyces graminis var. tritici. Canadian Journal of Microbiology. 2008; 54 (8): 600-609, ISSN 0008-4166, 1480-3275, DOI: 10.1139/W08-047.

Arévalo J, Hernández MA, Lamz A, Montes de Oca N, Hidalgo-Díaz L. Efecto de Pochonia chlamydosporia var. catenulata (Goddard) Zare y Gams como endófito facultativo en frijol (Phaseolus vulgaris L.). Rev. Protección Veg. 2019; 34(2). E-ISSN: 2224-4697.

Ghahremani Z, Escudero N, Saus E, Gabaldón T, Sorribas FJ. Pochonia chlamydosporia Induces Plant-Dependent Systemic Resistance to Meloidogyne incognita. Front. Plant Sci. 2019; 10:945, DOI: 10.3389/fpls.2019.00945.

Zavala-Gonzalez EA, Rodrıguez-Cazorla E, Escudero N, Aranda-Martinez A, Martınez-Laborda A, Ramırez-Lepe M, Vera A, Lopez-Llorca, LV. Arabidopsis thaliana root colonization by the nematophagous fungus Pochonia chlamydosporia is modulated by jasmonate signaling and leads to accelerated flowering and improved yield. New Phytologist. 2017; 213(1), 351-364.

Monteiro TSA, Valadares SV, de Mello INK, Moreira BC, Kasuya MCM., de Araújo JV, de Freitas LG. Nematophagus fungi increasing phosphorus uptake and promoting plant growth. Biological Control. 2018; 123: 71-75.

Hernández MA, Arévalo J, Marrero D, Hidalgo-Díaz L. Efecto de KlamiC® en la estimulación del crecimiento de vitroplantas de plátanos y bananos. Cultivos Tropicales. 2016; 37 (4): 168-172, ISSN 1819-4087, 0258-5936, DOI: 10.13140/RG.2.2.25696.69120.

Hidalgo-Díaz L, Kerry BR. Integration of biological control with other methods of nematode management. En: Ciancio A. y Mukerji K.G. (Eds). Integrated management and biocontrol of vegetable and grain crops nematode. 2008: 29-49.

Monfort E, López-llorca LV, Janson HB, Salinas J. In vitro soil receptivity assays to egg-parasitic nematophagous fungi. Mycological Progress, 5:18-23, 2006.

Kerry BR, Hirsch PR. Ecology of Pochonia chlamydosporia in the rhizosphere at the population, whole organism and molecular scales. In: Biological Control of Plant-Parasitic Nematodes. Springer Netherlands. 2011: 171-182.

Hidalgo-Díaz L, Franco-Navarro F, de Freitas LG. Pochonia chlamydosporia Microbial Products to Manage Plant-Parasitic Nematodes: Case Studies from Cuba, Mexico and Brazil. En: Manzanilla-López RH, Lopez-Llorca LV. (eds) Perspectives in Sustainable Nematode Management Through Pochonia chlamydosporia Applications for Root and Rhizosphere Health. Springer International Publishing AG. 2017: 311-342. ISBN 978-3-319-59224-4 (eBook), DOI: 10.1007/978-3-319-59224-4.

Cruz-Triana A, Rivero-González D, Infante-Martínez D, Echevarría-Hernández A, Martínez-Coca B. Manejo de hongos fitopatógenos en Phaseolus vulgaris L. con la aplicación de Trichoderma asperellum Samuels, Lieckfeldt & Nirenberg. Rev. Protección Veg. 2018; 33(3), E-ISSN: 2224-4697.

Morton DJ, Stroube WH. Antagonistic and stimulating effects of soilmicro-organism of Sclerotium. Phytopathol. 1955; 45: 417-420.

Reyes Y, Martínez B, Infante D. Evaluación de la actividad antagónica de trece aislamientos de Trichoderma spp. sobre Rhizoctonia sp. Rev. Protección Veg. 2008; 23 (2): 112-117.

Samaniego G, Ulloa S, Herrera S. Hongos del suelo antagonistas de Phymatotrichum omnivorum. Rev. Mex. Fitopatología, 1989; 8: 86-95.

Di Rienzo JA, Casanoves F, Balzarini MG, González L, Tablada M, Robledo CW. InfoStat versión 2017. Grupo InfoStat, FCA, Universidad Nacional de Córdova, Argentina. Disponible en: http://www.infostat.com.ar/

Kerry BR, Bourne JM. A Manual for Research on Verticillium chlamydosporium: A Potential Biological Control Agent for Root-Knot Nematodes Ed. International Organization for Biological Control of Noxious Animals and Plants, West Palaearctic Regional Section. 2002; 84 p. ISBN 92-9067-138-2, OCLC: 52572472.

Hernández O, Castillo D, Herrera R, Fuentes E, Drouaillet E, Santillán A. Actividad antagónica de Trichoderma spp. sobre Rhizoctonia solani in vitro. Investigación y Ciencia. 2016; 24 (67): 5-11.

Monfort E. Interacciones tritróficas entre hongos nematófagos, la rizosfera y sus patógenos fúngicos. [Tesis en opción título de Doctor en Biología]. Universidad de Alicante, Alicante, España. 2004; 172 pp.

Siddiqui IA, Shaukat SS. Combination of Pseudomonas aeruginosa and Pochonia chlamydosporia for control of root-infecting fungi in tomato. Journal of Phytopathology. 2003; 51 (a): 215-222.

Cassambai EL, Lekidayo L, Pocasangre LE. Uso de hongos endofíticos como promotores de crecimiento en el cultivo de banano. Revista Tierra Tropical. 2012; 8 (1): 9-18.

Barrios MA. Estudio de hongos endofíticos como inductores de resistencia para el control de sigatoka negra (Mycosphaerella fijiensis Morelet) en plátano. Tesis en opción al grado científico de Magister Scientiae en Agricultura Ecológica, Turrialba, Costa Rica. 2006: pp. 56.

Meneses A, Pocasangre LE, Somarriba E, Riveros AS, Rosales FE. Diversidad de hongos endofíticos y abundancia de nematodos en plantaciones de banano y plátano de la parte baja de los territorios indígenas de Talamanca. Agroforestería en las Américas. 2003; 10 (37-38): 59-62, ISSN 1022-7482.

Caballero H.A.J. Uso de hongos endofíticos de Trichoderma spp. para el biocontrol del mal de Panamá (Fusarium oxisporum f. sp. cubense) raza tropical en vitroplantas del cultivar Gros Michel (AAA). Tesis en opción al grado científico de Magister Scientiae en Agricultura Ecológica. Turrialba, Costa Rica. 2011.pp. 90.

Mingot-Ureta C, López-Moya F, López-Llorca LV. Worldwide strains of the nematophagous fungus Pochonia chlamydosporia are endophytic in banana roots and promote plant growth. Agronomy. 2020; 10 (9): 1299. https://doi.org/10.3390/agronomy10091299

Ceiro WG. Aportes a las bases científico-técnicas para el establecimiento de Pochonia chlamydosporia var. catenulata (Kamyschko ex Barron y Onions) Zare y Gams en el manejo de Meloidogyne spp. en Sistemas de Producción Protegidos de Hortaliza. [Tesis presentada en opción al grado científico de Doctor en Ciencias Agrícolas]. Universidad Central de Las Villas Marta Abreu, Cuba. 2015; pp.98.

Xue C., Penton CR, Shen Z, Zhang R, Huang Q, Li R, Ruan Y, Shen Q. Manipulating the banana rhizosphere microbiome for biological control of Panama disease. Scientific reports. 2015; 5, 11124.

Puertas AL, de la Noval B, Martínez B, Miranda I, Fernández F, Hidalgo-Díaz L. Interacción de Pochonia chlamydosporia var. catenulata con Rhizobium sp., Trichoderma harzianum y Glomus clarum en el control de Meloidogyne incognita. Rev. Protección Veg. 2006; 21(2): 80-89.

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