“Isolation, identification, and evaluation of indigenous strains of Trichoderma spp. as antagonistic fungi of soil pathogens”

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Published: Nov 14, 2018
Keywords:
antagonism, competition, biological control, micoparasitism, Trichoderma

Main Article Content

Luz María Samaniego-Fernández
Universidad de Matanzas
Maimouna Harouna
Universidad de Matanzas
Odalys Corbea
Aeropuerto Internacional “Juan Gualberto Gómez”
Ana Julia Rondón-Castillo
Universidad de Matanzas
Iraní Placeres-Espinosa
Universidad de Matanzas

Abstract

A survey was carried out in two agroecosystems with a red ferralitic soil in the province of Matanzas, Cuba, to isolate, identify and evaluate autochthonous strains of Trichoderma spp. From only one of the ecosystems, three autochthonous strains of this fungal species were isolated and identified. The in vitro antagonism of the autochthonous species obtained and of the reference species Trichoderma harzianum Rifai 3 (A-34) 2 and Trichoderma viride Persoon 5 (TS-3) 1 against the phytopathogenic fungi Rhizoctonia solani Kühn, Fusarium spp., and Sclerotium rolfsii Sacc., causal agents of crop diseases in the province, was evaluated using the dual culture technique. The daily linear growth (colony radii ), growth rate and percentage of radial growth inhibition (PICR) of the antagonists were determined. Their values were processed by Simple Variance Analysis. Trichoderma autochthonous strains isolated and identified were Trichoderma 2T-isolate, T. harzianum 6 (A-53) 2 and T. viride 4 (TS-3) 1, of which, Trichoderma 2T-isolate was the most efficient in vitro antagonist against the three phytopathogenic fungi, followed by T. viride 4 (TS-3) 1 (biocontroller of R. solani and S. rolfsii and with less antagonistic capacity against Fusarium spp.) and T. harzianum 6 (A-53) 2. Among the reference strains, T. harzianum 3 (A-34) 2 presented the greatest antagonism against these fungi. Both autochthonous and reference strains showed different levels of in vitro antagonistic activity agains tthe phytopathogens.

Article Details

How to Cite
Samaniego-Fernández, L. M., Harouna, M., Corbea, O., Rondón-Castillo, A. J., & Placeres-Espinosa, I. (2018). “Isolation, identification, and evaluation of indigenous strains of Trichoderma spp. as antagonistic fungi of soil pathogens”. Revista De Protección Vegetal, 33(3). Retrieved from https://revistas.censa.edu.cu/index.php/RPV/article/view/973
Issue
Vol. 33 No. 3 (2018): septiembre-diciembre
Section
ORIGINAL ARTICLES

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References

Hoyos L, Chaparro P, Abramsky M, Chet I, Orduz S. Evaluación de aislamientos de Trichoderma spp. contra Rhizoctonia solani y Sclerotium rolfsii bajo condiciones in vitro y de invernadero. Agron. Col. 2008; 26: 451-458.

Guédez C, Cañizalez LM, Castillo C, Olivar R. Evaluación in vitro de aislamientos de Trichoderma harzianum para el control de Rhizoctonia solani, Sclerotium rolfsii y Fusarium oxysporum en plantas de tomate. Rev. Soc. Ven. Microbiol. 2012; 32 (1):12.

Bale J, Van Lenteren JC, Bigler F. Biological control and sustainable food production. Phil. Trans. R. Soc. B. 2008; 363: 761-776.

Mendoza C. Enfermedades fungosas de hortalizas. Universidad Autónoma de Chapingo. 1996; Chapingo, Edo. de México, México, 85 pp.

Guchi E. Disease management practice on potato (Solanum tuberosum L.) in Ethiopia. World Journal of Agricultural Research. 2015; 3(1): 34-42.

Polanco CD, Castro JL. Estudios sobre el control biológico de Sclerotium rolfsii. Agronomía Tropical. 2005; 27: 539-547.

Espinoza LL, Mendoza C. Etiología de la pudrición de raíz y cuello del chile (Capsicum annuum L.) ocasionado por el hongo Phytophthora capsici en la región de Valseguillo, Puebla, México. Fitopatología. 2001; 30: 47-55.

Reyes A, Cristóbal J, Ruiz E, Tun JM. Inhibición del crecimiento in vitro de Fusarium sp. aislado de chile habanero (Capsicum chinensis) con hongos antagonistas. Fitosanidad. 2012; 16(3): 161-165.

Kücük C, Kivanc M. Isolation of Trichoderma spp. and determination of their antifungal, biochemical and physiological features. Turkish Journal of Biology. 2003; 27: 247- 253.

Hoyos L, Duque G, Orduz S. Antagonismo in vitro de Trichoderma spp. sobre aislamientos de Sclerotinia spp. y Rhizoctonia spp. Revista Colombiana de Ciencias Hortícolas. 2008; 2(1): 76-86.

Michel AC, Otero MA, Ariza R, Barrios A, Alarcón N. Eficiencia biológica de cepas nativas de Trichoderma spp., en el control de Sclerotium rolfsii Sacc., en cacahuate. Avances en Investigación Agropecuaria. 2013; 17(3): 89-107.

Pérez H, Sanabria N. Control in vitro e in vivo de Fusarium oxysporum f. sp. lycopersici con Trichoderma spp. y Bacillus spp. Cursos-foros del XXIII Congreso Venezolano de Fitopatología. Caracas, Venezuela. 2013; [https://sites.google.com/site/cursosforosdelxxiiicongvenfito/congreso/resumenes-socializados/trabajos-por-instituciones/universidad-central-de-venezuela-ucv] [Consulta: 15 de abril de 2018].

Infante A, Pineda M, Portillo G. Trichoderma harzianum Rifai como agente biocontrolador in vitro de enfermedades fungosas asociadas a Solanum lycopersicum L. Cursos-foros del XXIII Congreso Venezolano de Fitopatología. Caracas, Venezuela. 2013; [https://sites.google.com/site/ideafitopatologia2013/home/resumenes-socializados/indice-general-de-resumenes/trichoderma-harzianum-rifai-como-agente-de-biocontrolador-in-vitro-de-enfermedades-fungosas-asociadas-a-solanum-lycopersicum-l] [Consulta: 15 de abril de 2018].

Páez O. Uso Agrícola de Trichoderma. 2006; [Disponible en: http://www.soilfertility.com/trichoderma/espagnol/index.shtml] [Consulta: 22/5/2016]

Hernández A, Pérez JM, Bosch D, Castro N. Clasificación de los Suelos de Cuba 2015. Instituto Nacional de Ciencias Agrícolas. Instituto de Suelos. Ediciones INCA, Cuba, 2015; 91p.

Google Map. Directorio Cartográfico (DICES). 2018; [Disponible en: Disponible en: http://mapasamerica.dices.net/cuba/mapa.php?nombre=Guanabana&id=23634 ] [Consulta: mayo, 2018].

Bateman R, Carey M. Metodología para la toma de muestras. Boletín Técnico No. 2. Ediciones CABI, Reino Unido, 1995; 21p.

Villegas MA. Trichoderma viride Pers. Características generales y su potencial biológico en la agricultura sostenible. Orius Biotecnología. Colombia. 2005; [Disponible en: http://www.oriusbiotecnologia.com/site/16.index.php?id=20,66,0,0,1,0]. [Consulta: 25/4/2016].

Arias M. Hongos antagonistas o micopatógenos. En: Guía de insumos biológicos para el Manejo Integrado de Plagas. Corporación para Desarrollo de Insumos y Servicios Agroecológicos Harmonia (Ed.). 2004; 59-62. ISBN: 958-33-5875-4.

Sandoval I, Stefanova M. Efectividad de biopreparados de Trichoderma spp. en el control de los hongos fitopatógenos del suelo. Boletín Técnico No. 2. Instituto de Investigaciones de Sanidad Vegetal (INISAV). La Habana, Cuba. 2000; 22 p.

Rifai MA. A revision of the genus Trichoderma. Mycological Papers. 1969; 116:1-56.

Samuels GJ. Trichoderma: Systematics, the sexual state, and ecology. Phytopathology. 2006; 96(2): 195-206.

Barnett HL, Hunter BB. 1998. Illustrated genera of imperfect fungi. (4th Ed). The American Phytopathological Society. 1998; St. Paul, Minnesota, USA. pp. 218.

Vero S, Mondino P. Curso de Control Biológico de Enfermedades de Plantas (PEDECIBA Química); Unidad de Fitopatología. Anexo prácticos. 2003. [Disponible en: http://www.pv.fagro.edu.uy/fitopato/Curso_CB/Anexo_practicos.html (pp. 3)] [Consulta: 16/02/2017].

Stefanova M, Vázquez L. Características y uso de bioplaguicidas contra plagas del suelo. Manual para la Adopción del Manejo Agroecológico de Plagas en Fincas de la Agricultura Suburbana. Ed. Asociación Cubana de Técnicos Azucareros y Forestales (ACTAF). La Habana. 2011; pp. 245-265.

Morton DJ, Stroube WH. Antagonistic and stimulatory effects of soil microorganisms upon Sclerotium rolfsii. Phytopathology. 1955; 45: 417-420.

Elías RO, Arcos O, Arbeláez G. Estudio del antagonismo de algunas especies de Trichoderma aisladas de suelos colombianos en el control de Fusarium oxysporum y Rhizoctonia solani. Agron. Colomb. 1993; 10:52-61.

Worasatit N, Sivasithamparam K, Ghisalberti EL, Rowland C. Variation in pyrone production, lytic enzymes and control of Rhizoctonia root rot of wheat among single-spore isolates of Trichoderma koningii. Mycological Research. 1994; 98:1357-1363.

Reyes T, Rodríguez G, Pupo A, Alarcón L, Limonta Y. Efectividad in vitro de Trichoderma harzianum Rifai para el biocontrol de Rhizoctonia solani Kühn y Pyricularia grisea Sacc. aislados en el cultivo del arroz (Oryza sativa L.). Fitosanidad. 2007; 11 (1): 29-33.

Hernández A, Sierra A, Carr A. Evaluación in vitro del antagonismo de especies de Trichoderma sobre hongos fitopatógenos que afectan las vitroplantas de piña (Ananas comosus (L.) Merr). Fitosanidad. 2006; 10 (2): 105- 108.

Fernández RJ, Suárez CL. Antagonismo in vitro de Trichoderma harzianum Rifai sobre Fusarium oxysporum Schlecht f. sp. passiflorae en maracuyá (Passiflora edulis Sims var. flavicarpa) del municipio zona bananera colombiana. Rev. Fac. Nac. Agron. Medellín. 2009; 62(1): 4743-4748.

Caballero AJ, Pocasangre LE, Casanoves F, Avelino J, Tapia AC, Ortiz JL. Uso de aislamientos endofíticos de Trichoderma spp. para el biocontrol del Fusarium oxysporum f. sp. cubense (Mal de Panamá) raza 1 en vitroplantas de banano del cultivar Gros Michel (AAA) en condiciones de invernadero. Universitas, 2013; 4 (1): 71-82.

Srivastava RK, Prasad RD, Rangeshwaran R, Kannan P. Detection and Quantification of Proteins Induced by Trichoderma in Chickpea-Rhizoctonia System. Plant Disease Research, 2002; 17(2): 252-255.

Kumar K, Amaresan N, Bhagat S, Madhuri K, Srivastava RC. Isolation and Characterization of Trichoderma spp. for Antagonistic Activity Against Root Rot and Foliar Pathogens. Indian J Microbiol. 2012; 52(2): 137-144.